Caracterización biológica de dos aislados de Leptospira spp. procedentes de pacientes colombianos con síndrome de Weil

Autores

  • Harold E. Durango-Galván Universidad de Antioquia
  • Juan D. Rodas-González Universidad de Antioquia
  • Bruno L. Travi Universidad de Texas
  • Piedad Agudelo-Flórez Universidad CES

DOI:

https://doi.org/10.17533/udea.hm.5225

Palavras-chave:

dosis letal 50, histopatología, leptospira, leptospirosis, modelo animal

Resumo

Se describe la dinámica de la infección experimental en el modelo hámster de dos aislados de Leptospira spp. recuperados de pacientes con síndrome de Weil, procedentes de poblaciones Antioqueñas. La infección experimental se realizó mediante inoculación intraperitoneal de los aislados en hámsteres juveniles. La evaluación de marcadores de función hepática y renal, además de un reactante de fase aguda de inflamación, se realizó en dos momentos postinfección. A los 18 días postinoculación se establece el punto final, colectando sangre y realizando la necropsia, tomando tejido de hígado, riñón y pulmón, para cultivo en EMJH y en formol tamponado para estudio histopatológico. Los resultados de las pruebas de función renal, hepática y la proteína C reactiva fueron variables, y aunque mostraron ligeros aumentos no se correlacionó con la presencia de signos clínicos; sin embargo, en la histopatología se tiene la expectativa de evidenciar algún cambio importante, ya que se obtuvo crecimiento bacteriano a partir del cultivo de riñón e hígado en algunos de los animales. Los resultados de la evaluación de la virulencia a través de la determinación de la dosis letal 50 sugiere que los dos aislados eran poco virulentos o habían perdido virulencia quizás debido a los pases sucesivos in vitro a que se sometieron antes de inocularlos en los animales.
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Biografia do Autor

Harold E. Durango-Galván, Universidad de Antioquia

Escuela de Microbiología y Bioanálisis Universidad de Antioquia, Medellín, Colombia.

Juan D. Rodas-González, Universidad de Antioquia

Grupo Centauro, Escuela de medicina Veterinaria, Facultad de Ciencias Agrarias,
Universidad de Antioquia, Medellín, Colombia.

Bruno L. Travi, Universidad de Texas

Universidad de Texas, San Antonio, Estados Unidos de América.

Piedad Agudelo-Flórez, Universidad CES

Instituto Colombiano de Medicina Tropical Universidad CES, Sabaneta, Colombia.

Referências

Silva EF, Santos CS, Athanazio DA, Seyffert N, Seixas FK, Cerqueira GM, et al. Characterization of virulence of Leptospira isolates in a hamster model. Vaccine. 2008; 26: 3892-6.

Ko AI, Goarant C y Picardeau M.Leptospira: the dawn of the molecular genetics era for an emerging zoonotic pathogen. Nature Reviews. 2009; 7: 736-47.

Levett PN. Leptospirosis. Clin Microbiol Rev. 2001; 14: 296-326.

Pereira MM, Pereira JJ, Alves M, Da Silva MF, Pelajo M, Lenzi HL, et al. Experimental leptospirosis in Mar-moset Monkeys (Callithrix Jacchus): a new model for studies of severe pulmonary leptospirosis. Am J Trop Med Hyg. 2005; 72: 13-20.

Ko AI, Galvao RM, Ribeiro Dourado CM, Johnson WD, Riley LW. Urban epidemic of severe leptospirosis in Brazil. Salvador Leptospirosis Study Group. Lancet. 1999; 4: 820-5.

Faine S. Guidelines for the control of leptospirosis. Word Health Organization; Geneva: 1982.

Levett PN, Morey RE, Galloway RL, Turner DE, Stei-gerwaltand AG and Mayer LW. Detection of pathogenic leptospires by real-time quantitative PCR. J Med Microbiol. 2005; 54: 45-9.

Fajardo EM, Ortiz B, Chávez A, Gainza N, Izquierdo L, Hernández Y, et al. Estandarización de la dosis letal 50 de las cepas de Leptospira interrogans utilizadas en el control de la vacuna cubana contra la leptospirosis humana. Rev Cubana Med Trop. 1998; 50: 22-6.

Reed LJ, Muench H. A simple method of estimating the fifty percent endpoints. Am J Hyg. 1938; 27: 493-7.

Faine S, Adler B, Bolin C, Perolat P.Leptospira y leptospirosis. 2nd ed. Melbourne, Australia: MediSci; 1999.

Chomczynski P, Sacchi N. Single-step method of RNA isolation by acid guanidinium thiocyanate-phenol-chloroform extraction. Anal Biochem. 1987; 162: 156-9.

Vernel PF, Merien F. Proinflammatory and immunomodulatory cytokine mRNA time course profiles in hamsters infected with a virulent variant of Leptospira interrogans. Infect Immun. 2006; 74: 4172-9.

Vernel PF, Goarant C. Differential Cytokine Gene Ex-pression According to Outcomeina Hamster Model of Leptospirosis. Neglected Tropical Diseases. 2010; 4: e582.

World Health Organization, International Leptospirosis Society. Human leptospirosis: guidance for diagnosis, surveillance and control 2003. [consultado 05/05/2006] Disponible en: http://www.med.monash.edu.au/microbiology/staff/adler/ilspage.html/

Hernández Y, Fajardo EM, Ortíz B. Método para revitalizar las cepas de Leptospira interrogans utilizadas en los ensayos de potencia de la vacuna antileptospirósica. Health IG; 1999. p. 7-11.

González A, Batista N, Valdés Y, González M. Crecimiento, virulencia y antigenicidad de Leptospirainterrogans serovar mozdok en medio EMJH modificado. Rev Cubana Med Trop. 2002; 54: 32-6.

Publicado

2010-05-06

Como Citar

Durango-Galván, H. E., Rodas-González, J. D. ., Travi, B. L., & Agudelo-Flórez, P. (2010). Caracterización biológica de dos aislados de Leptospira spp. procedentes de pacientes colombianos con síndrome de Weil. Hechos Microbiológicos, 1(1), 65–72. https://doi.org/10.17533/udea.hm.5225

Edição

Seção

Comunicaciones breves