Propagación in vitro de Espeletia paipana S. Díaz y Pedraza, frailejón endémico en peligro de extinción

  • María A. Bohórquez-Quintero Universidad Pedagógica y Tecnológica de Colombia
  • Eyda J. Araque-Barrera Universidad Pedagógica y Tecnológica de Colombia
  • José C. Pacheco-Maldonado Universidad Pedagógica y Tecnológica de Colombia
Palabras clave: Asteraceae, conservación, germinación, micropropagación, Páramos, reguladores de crecimiento

Resumen

En la presente investigación se estableció un protocolo de micropropagación para Espeletia paipana S. Díaz y Pedraza, especie en peligro de extinción con una población actual de 26 plantas adultas. Los explantes primarios (semillas) fueron desinfectados superficialmente con hipoclorito de sodio (NaOCl) o hipoclorito de calcio [Ca(ClO)2]. Los embriones asépticos se cultivaron en medio MS con macroelementos a diferentes concentraciones, con y sin ácido giberélico (GA3), kinetina (KIN) y 3-ácido indolbutírico (AIB), también se estudió el efecto de luz y temperatura sobre la germinación; para la multiplicación de brotes se utilizó MS suplementado con AIB y bencil amino purina (BA). Para el enraizamiento se probó AIB+BA, AIB y ácido naftalenacético (ANA) y para el endurecimiento de plántulas se ensayaron diferentes mezclas de capote, tierra y arena. Los resultados mostraron que el mayor porcentaje de embriones asépticos (66%) se obtuvo utilizando 1% de Ca(ClO)2. El mayor porcentaje de embriones germinados (50%) se registró en medio basal MS/4 suplementado con 1 mg l-1 de GA3 y la mayor cantidad de embriones reactivos y de plántulas viables se obtuvo a 24 ºC e iluminación continua. Los mejores resultados de proliferación de brotes se cuantificaron en MS con 0,5 mg l-1 AIB + 0,05 mg l-1 de BA, mientras que el 85% de enraizamiento se logró en MS con 5 mg l-1 de AIB. El mayor porcentaje de plántulas viables (65%) en invernadero se cuantificó utilizando una mezcla de capote y tierra, proporción 3:1. El protocolo establecido es aplicable para desarrollar programas de propagación masiva que permitan evitar la extinción de E. paipana.

|Resumen
= 769 veces | PDF
= 189 veces| HTML
= 32 veces|

Descargas

La descarga de datos todavía no está disponible.

Citas

Anónimo. 2002. Programa para el manejo sostenible y restauración de ecosistemas de la alta montaña colombiana: páramos. Bogotá: Ministerio del Medio Ambiente, Dirección General de Ecosistemas. Sin páginas.

Arciga M. 2011. Germinación in vitro de Guarianthe aurantiaca Bateman (Orquidaceae). [Tesis pregrado] [Morela Mich.]: Universidad Michoacana de San Nicolás de Hidalgo. p. 50.

Arditti J. 1992. Fundamentals of orchid biology. New York: John Wiley. p. 487-488, 504-549, 898. En: Arciga M. 2011. Germinación in

vitro de Guarianthe aurantiaca Bateman (Orquidaceae). [Tesis pregrado] [Morela Mich.]: Universidad Michoacana de San Nicolás de Hidalgo. p. 50.

Bramwell D. 1990. The role of in vitro cultivation in the conservation of endangered species. En: Hernández B, Clemente M, Heywood V, editores. Techniques in Botanic Gardens. Koenigstein (Germany): Koeltz Scientific Books. p. 3-15.

Calderón E, Galeano G, García N, editores. 2005. Libro Rojo de Plantas de Colombia. Volumen 2: Palmas, Frailejones y Zamias. Bogotá (Colombia): Instituto Alexander von Humboldt - Instituto de Ciencias Naturales de la Universidad Nacional de Colombia - Ministerio de Ambiente, Vivienda y Desarrollo Territorial. p. 454.

Cárdenas J, Álvarez J, Barragán E, Rivera C. 2010. Efecto del ácido giberélico y la 6-bencilaminopurina sobre el desarrollo de yemas en injertos de cacao (Theobroma cacao L.). Agronomía Colombiana, 28 (1): 19-27.

Engelmann F.1991. In vitro conservation of tropical plant germplasm a review. Euphytica, 57 (3): 227-243.

Fujii J, Slade D, Olsen R, Ruzin S, Redenbaugh K. 1990. Alfalfa

somatic embryo maturation and conversion to plants. Plant Science, 72 (1): 93-100.

García A, León P. 2004. Zonas de Páramo. Bogotá (Colombia): Congreso de la Republica de Colombia, Oficina de Asistencia Técnica

Legislativa. Estudio de Antecedentes Sobre el Proyecto de Ley N.o 032 de 2003.

García J, Hernández A, Acebo Y, Rives N. 2008. Obtención de un nuevo método de desinfección de semillas de arroz. Cultivos Tropicales, 29 (4): 55-59.

González G, Alemán S, Trujillo R, Domech R, Abreu E, Pérez Y. 2002. Influencia del 6-bencilaminopurina sobre el comportamiento in vitro de plantas de Henequén obtenidas a partir de embriones. Biotecnología Vegetal, 2 (4): 235-238.

Gutiérrez T. 1988. Enraizamiento de estacas de cuatro especies nativas chilenas mediante el uso de auxinas sintéticas [Tesis de Pregrado]. [Valdivia (Chile)]: Universidad Austral de Chile. p. 74.

Jaakola L, Tolvanen A, Laine K, Hohtola A. 2001. Effect of N6– isopentenyladenine concentration on growth initiation in vitro and rooting of bilberry and lingonberry microshoots. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 66 (1): 73-77.

Lobo M, Delgado O, Cartagena J, Fernández E, Medina C. 2007. Categorización de la germinación y la latencia en semillas de chirimoya (Annona cherimola L.) y guanábana (Annona muricata L.), como apoyo a programas de conservación de germoplasma. Agronomía Colombiana, 25 (2): 231-244.

López F. 2004. Diagnóstico del estado de conservación de Espeletia paipana S. Díaz y Pedraza y E. jaramilloi S. Díaz (Asteraceae) especies endémicas del departamento de Boyacá, Colombia [Tesis Pregrado]. [Tunja (Colombia)]: Instituto Alexander Von Humboldt, Universidad Pedagógica y Tecnológica de Colombia. p. 75.

Martínez G, Arena M, Benavides M, Eliasco E, Curvetto N. 2007. Role

of polyamines during in vitro rhizogenesis of Nothofagus nervosa using successive culture media. New Forests, 34 (1): 83-93.

Morales M, Gil P, Díaz C, Sanabria L, Torres L. 2011. Creación del banco de germoplasma, vivero regional y propagación de Espeletia

paipana en la zona de influencia del Parque Natural Municipal Ranchería, Municipio de Paipa. Tunja (Colombia): Universidad Pedagógica y Tecnológica de Colombia. Informe Técnico Grupo Sistemática Biológica-SISBIO Convenio de cooperación UPTC- CORPOBOYACÁ N.° 083-2009.

Morales M, Gil P, Díaz C, Torres L, Alvarado V, Hernández A, Arias S. 2011a. Guía ilustrada de propagación de especies silvestres del Parque Natural Municipal Ranchería y su área de influencia (Paipa-Boyacá) Colombia. Tunja (Colombia): Editorial Uptc. p. 134.

Murashige T, Skoog F. 1962. A revised medium for rapid growth and bio-assays with Tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum, 15 (3): 473-497.

Pedroza-Manrique J, Caballero M. 2009. Evaluación del efecto del medio MS y la temperatura en el desarrollo de propágulos de Marchantia polymorpha l. (Marchantiaceae) bajo condiciones in vitro y ex vitro. Revista Colombiana de Biotecnología, 11 (2): 85-104.

Rache L, Pacheco J. 2009. Micropropagación de Espeletiopsis muiska (Cuatrecasas), frailejón del Parque Natural La Ranchería- Boyacá, Colombia. Agronomía Colombiana, 27 (3): 349-358.

Ríos D, Avilés F, Sánchez M, Escobar R, Pereira G. 2005. Variación de la tasa de enraizamiento asociada al número de subcultivo y diámetro de microtallos de castaño Castanea sativa. Mill. Agricultura Técnica (Chile), 65 (3): 258-264.

Saldívar P, Laguna A, Gutiérrez F, Domínguez M. 2010. Ácido giberélico en la germinación de semillas de Jaltomata procumbens (Cav.) J. L. Gentry. Agronomía Mesoamericana, 21 (2): 327-331.

Sánchez A. 2004. Análisis morfométrico y demográfico de Espeletia pycnophylla Cuatrecasas, en un gradiente altitudinal provincia de Carchi-Ecuador [Tesis Pregrado]. [Bogotá (Colombia)]: Universidad de los Andes. p. 93.

Sánchez C, Cely G. 2003. Evaluación del estado de conservación de la vegetación en la reserva Ranchería, Paipa, Boyacá [Tesis de Pregrado]. [Tunja (Colombia)]: Universidad Pedagógica y Tecnológica de Colombia. p. 147.

Saucedo S, Ramos L, Varas E, Carmigniani F. 2008. Propagación clonal in vitro de Piña (Ananas comosus L. Merr) variedades champaka y hawaiana. Ciencia y Tecnología, 1 (1): 49-54. Fecha de acceso 12 de diciembre de 2012. Disponible en: <http://www.uteq.edu.ec/revistacyt/publico/archivos/C2_articulo9.pdf>.

Schumülling T. 2004. Cytokinin. In: Lennarz W, Lane M, editors. Encyclopedia of Biological Chemistry. Berlin (Germany): Academic Press Elsevier Science. p. 1-7.

SOGEOCOL (Sociedad Geográfica de Colombia - Academia de Ciencias Geográficas). 2003. El Páramo de Sumapaz un ecosistema estratégico para Bogotá [Internet]. Sociedad Geográfica de Colombia Academia de Ciencias Geográficas. Fecha de acceso: 10 de febrero de 2013. Disponible en: <http://www.sogeocol.edu. co/documentos/Paramos.pdf>.

Suárez I, Espitia M, Pertuz I. 2006. Efecto de auxinas y citocininas en la multiplicación y enraizamiento in vitro de Stevia rebaudiana Bertoni. Fitotecnia Colombiana, 6 (2): 1-8.

Uribe M, Sandoval M, Méndez A, Mora F, Delaveau C. 2011. In vitro rooting of Beilschmiedia berteroana, endemic to the South Central area of Chile. Ciencia e Investigación Agraria, 38 (1): 107-115.

Vázquez C, Orozco A, Rojas M, Sánchez M, Cervantes V [Internet]. 1997. Fondo de Cultura Económica México. D. F. Fecha de acceso: 13 de Noviembre de 2013. Disponible en: <http://bibliotecadigital.ilce. edu.mx/sites/ciencia/volumen3/ciencia3/157/htm/lcpt157.htm>.

Watkinson J, Pill W. 1998. Gibberellic acid and presowing chilling increase seed germination of indiangrass (Sorghastrum nutans (L.) Nash). HortScience, 33 (5): 849-851.

Publicado
2017-10-02
Sección
Artículos completos