Valores morfométricos en larvas de Yamú Brycon amazonicus (Pisces: Characidae) obtenidas con semen fresco y crioconservado
DOI:
https://doi.org/10.17533/udea.acbi.329340Palabras clave:
Brycon amazonicus, crioconservación, desarrollo larval, morfometría, yamúResumen
Con el propósito de evaluar diferencias en el desarrollo corporal, el crecimiento y la sobrevivencia de larvas de yamú (Brycon amazonicus) obtenidas a partir de la fertilización de oocitos con semen fresco (SF) y semen crioconservado (SC), machos y hembras de la especie fueron inducidos hormonalmente con extracto de hipófisis de carpa. El semen obtenido fue evaluado y diluido en una solución de yema de huevo, glucosa y dimetilsulfoxido y congelado en vapores de nitrógeno. Las larvas fueron obtenidas de la seminación en seco de oocitos obtenidos de una misma hembra, con semen fresco o crioconservado y evaluadas desde la eclosión (0 horas) hasta 60 horas posteclosión (HPE). Se determinó la longitud total (LT), longitud notocordal (LN), el volumen del saco vitelino (VSV) y la sobrevivencia desde 35 HPE hasta 60 HPE. Para LT sólo hubo diferencias significativas (p < 0,05) a la 42 y 54 HPE, siendo mayores las larvas obtenidas de SC (6,5 ± 0,04 y 6,8 ± 0,04 mm, respectivamente). La LN fue significativamente diferente a las 0, 3 y 54 HPE, con un mayor desarrollo de larvas obtenidas de SF en la hora 0 (3,3 ± 0,02 mm) y para SC en la 3 y 54 HPE (4,1 ± 0,05 y 6,6 ± 0,04 mm, respectivamente). El VSV a la 9 HPE fue mayor para SF (0,6 ± 0,01 mm3). Con relación a la sobrevivencia no hubo diferencias entre los dos tratamientos. En conclusión, el desarrollo corporal, crecimiento y la sobrevivencia de larvas de yamú obtenidas con SF y SC bajo las condiciones experimentales descritas anteriormente no varía significativamente para la LT, LN y VSV hasta la 60 HPE.
Descargas
Citas
Aitken J, Fisher H. 1994. Reactive oxygen speciesgeneration and human spermatozoa: the balance ofbenefit and risk. BioEssays, 16:259-267.
Alvarez E, Storey BT. 1992. Evidence for increased lipidperoxidative damage and loss of superoxidedismutase activity as a mode of sublethalcryodamage to human sperm duringcryopreservation. Journal of Andrology, 13:232-241.
Arias-Castellanos JA. 1995. Contribución al conocimien-to biológico de los peces de los llanos yamú (Bryconsiebenthalae) y sapuara (Semaprochiloduslaticep), con fines de cultivo. Informe final Universi-dad de los Llanos-COLCIENCIAS. Colombia
Arias-Castellanos JA. 2001. Avances en la nutrición yalimentación del yamú. Pp. 4-8. En: Eslava MPR (ed.).Memorias VII jornada de acuicultura tercera re-unión regional del género Brycon. Universidad delos Llanos (IALL). Villavicencio, Colombia.
Arias-Castellanos JA; Balaguera D; Rodriguez CM. 2003.Desarrollo larvario del yamú Brycon siebenthalae.Revista Orinoquia, 7(1-2):28-33.
Atencio-García VJ. 1999. Alguns aspectos da fisiologiado yamú (Brycon siebenthalae, Eigenman 1912).Revisión teórica acerca de la especie yamú.Universidade Federal de Santa Catarina.Florianópolis, Brasil.
Atencio-García VJ. 2000. Influência da primera alimentaçãona alevinagem do yamú Brycon siebenthalae(Eigenmann, 1912). Disertación (M.Sc Acuicultura).Departamento de Aquicultura, Centro de CiênciasAgrárias, Universidade Federal de Santa Catarina.Floriniapolis, Brasil.
Atencio-García VJ, Zaniboni FE, Pardo CSC, Arias CJA,Vásquez TW. 2002. Influencia de la primera alimenta-ción en el alevinaje del yamú Brycon siebenthalae.Pp. 65-76. En: Eslava MPR (ed.). Memorias VIII jor-nada de acuicultura. Universidad de los Llanos(IALL). Villavicencio, Colombia.
Ceccarelli P. 1997. Canibalismo em larvas de matrinxãBryconcephalus (Günther, 1869). Disertación demaestría. Instituto de Biociências de Botucatu.Universidade Estadual Paulista. Botucatu, Brasil.
Cruz-Casallas PE, Pardo CSC, Arias CJA, Lombo RDA.2004. Cryopreservation of yamú Brycon siebenthalaeMilt. Journal of the World Aquaculture Society,35(4):529-535.
Cruz-Casallas PE, Velasco-Santamaría YM. 2004.Crioconservación de semen de yamú (Bryconsiebenthalae): calidad seminal, dosis inseminante ysistemas de empaque. Pp. 27-34. En: Eslava MPR(ed.). Memorias II Congreso Colombiano deAcuicultura. Universidad de los Llanos (IALL).Villavicencio, Colombia.
Galindo BD. 2002. Descripción del desarrollo larval delyamú (Bryconsiebenthalae). Tesis de pregrado. Fa-cultad de Zootecnia. Universidad de la Salle. Bogo-tá, Colombia.
Gilbert SF. 1949. Developmental biology.SinauerAssociates, Inc. U. S. A.
Gisbert E, Williot P. 1997. Larval behavior and effect ofthe timing of initial feeding on growth and survivalof Siberian sturgeon (Acipenserbaen) larvae undersmall scale hatchery production. Aquaculture,156:63-76.
González E, Fresneda A. 1999. Criopreservación de semende cachama blanca (Piaractus brachipomus) y bagrerayado (Pseudoplatystoma fasciatum). Revista Co-lombiana de Ciencias Pecuarias, 12(suplemen-to):197-199.
Iglesias J, Rodríguez-Ojea G, Peleteiro JB. 1995. Effectof light and temperature on the development of turboteggs (Scophthalmus maximus L.). ICES MarineScience Symposia, 201:40-44.
Jenkis KK, Woods LC. 2002. The cryopreservation ofstriped bass Moronesaxatilis semen. Journal of theWorld Aquaculture Society, 33(1):70-77.
Kubota Y, Shimada A, Shima A. 1995. DNA alterationdetected in the progeny of paternally irradiatedJapanese medaka fish (Oryzias latipes). ProceedingsNational Academy of Science (U. S. A.), 92:330-334.
Labbe C, Martoriati A, Devaux A, Maisse G. 2001. Effect ofsperm cryopreservation on sperm DNA stability andprogeny development in rainbow trout. MolecularReproduction and Development, 60:397-404.
Lima F. 2003. Subfamily Briconinae (Characins, tetras). Pp.742. En: Reis RE, Kullander SO, Ferraris CJ (eds.).Check list of the freshwater fishes of South and Cen-tral American. Porto Alegre: Edipucrs. Brasil.
Lopes R, Senhorini JA, Suarez. 1995. Desenvolvimientoembrionario e larval do matrinxã (Brycon cephalus).Boletín técnico CEPTA. Pirasununga Brasil.
Lopes S, Jurisicova A, Sun JG, Casper RF. 1998. Reactiveoxygen species: potential cause for DNAfragmentation in human spermatozoa. HumanReproduction, 13:896-900.
Marsteinsdottir G, Steinarsson A. 1998. Maternalinfluences on the size and viability of Iceland codGadus morhua eggs and larvae. Journal of FishBiology, 52:1241-1258.
Miskolczi E, Mihalffy S, Patakiné E, Urbányi B, HorváthA. 2005. Examination of larval malformations in Africancatfish Clarias gariepinus following fertilization withcryopreserved sperm. Aquaculture, 247:119-125.
Nascimento FL, Lima CARMA. 2000. Descrição de larvasdas principais espécies de peixes utilizadas pela pes-ca no Pantanal. Boletim de Pesquisa (EMBRAPAPantanal, Brasil), 25:1-25.
Ogier B, Le Vern Y, Kerboeuf D, Maisse G. 1997. Flowcytometric evaluation of mitochondrial activity andmembrane integrity in fresh and cryopreservedrainbow trout (Oncorhynchus mykiss) spermatozoa.Cryobiology, 34:141-149.
Ogier B, Labbé C, Maisse G. 1999. Membrane integrity,mitochondrial activity, ATP content, and motility ofthe European catfish (Silurus glanis) testicularspermatozoa after freezing with differentcryoprotectants. Cryobiology, 39:177-184.
Osse JWM, van den Boogaart JGM. 1995. Fish larvae,development, allometric growth, and the aquaticenvironment. ICES Marine Science Symposia,201:21-34.
Panagiotaki P, Geffen AJ. 1992. Parental effects on sizevariation in fish larvae. Journal of Fish Biology,41:37-42.
Pepin P, Myers RA. 1991. Significance of egg and larvalsize to recruitment variability of temperate marine fish.Canadian Journal of Fisheries and AquaticSciences, 48:1802-1828.
Pinto M, Castagnolli N. 1984. Desenvolvimiento inicial dupacu Colossoma mitrei (Berg, 1895). AnuariosSimpósio Brasileiro Aquicultura, 3:12.
Potthoff T. 1984. Clearing and staining techniques. Pp. 35-37. En: Moser HG, Richards WJ, Cohen DM, FahayMP, Kendall AW, Richardson SL (eds.). Ontogeny and sistematics of fishes. American Society ofIchthyologists and Herpetologists. Florida, U. S. A.
Probst WN, Kraus G, Rideout RM, Trippel EA. 2006.Parental effects on early life history traits of haddockMelanogrammus aeglefinus. ICES Journal ofMarine Science, 63:224-234.
Rana KJ. 1985. Influence of egg size on the growth, onsetof feeding, point-of-no-return and survival of unfedOreochromis mossambicusfry. Aquaculture,46:1802-1828.
Rideout RM, Triple EA, Litvak MK. 2004. Paternal effectson haddock early life history cleavage patterns.Journal of Fish Biology, 64:695-701.
Rodriguez H, Valentine MR, Holmquist GP, Akman SA,Termini J. 1999. Mapping of peroxyl radicalinduced damage on genomic DNA. Biochemistry,38:16578-16588.
Saillant E, Chatain B, Forstier A, Przybyla C, Fauvel C.2001. Parental influence on early development inthe European sea bass. Journal of Fish Biology,58:1585-1600.
Sanches PV, Nakatani K, Bialetzki A. 1999. Morphologicaldescription of the developmental stages ofParauchenipterus galeatus (Linnaeus, 1766)(Siluriformes, Auchenipteridae) on the floodplain ofthe upper Paraná river. Revista Brasileira deBiologia, 59(3):429-438.
Senhorini JA. 1995. Desenvolvimiento larval do pacuPiaractusmesopotamicus, Holmberg, 1987 (PiscesCharacidae), em viveiros. Disertación de maestria.Universidade Estadual Paulista Júlio de MesquitaFilho, UNESP, Brasil.
Thorpe JE, Morgan GIG. 1978. Parental influence on growthrate, smolting rate and survival in hatchery rearedjuvenile Atlantica salmon Salmo salar. Journal ofFish Biology, 13:549-556.
Torres QE. 2000. Apuntes sobre el cultivo del yamú en losLlanos Orientales. Pp. 9-10. En: Eslava MPR (ed.).Memorias VI jornada de acuicultura segunda re-unión regional del género Brycon. Universidad delos Llanos (IALL). Villavicencio, Colombia.
Trasler JM, Hales BF, Robaire B. 1985. Paternalcyclophosphamide treatment of rats causes fetal lossand malformations without affecting male fertility.Nature, 316:144-146.
Urbányi B, Miskolczi E, Mihálffy S, Patakiné EV, HorváthÁ. 2003. Examination of larval malformations in Africancatfish Clariasgariepinus following fertilization withcryopreserved sperm. Book of abstracts WorldAquaculture. Salvador, Brasil.
Descargas
Publicado
Cómo citar
Número
Sección
Licencia
Derechos de autor 2017 Actualidades Biológicas
Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-NoComercial-CompartirIgual 4.0.
Los autores autorizan de forma exclusiva, a la revista Actualidades Biológicas a editar y publicar el manuscrito sometido en caso de ser recomendada y aceptada su publicación, sin que esto represente costo alguno para la Revista o para la Universidad de Antioquia.
Todas las ideas y opiniones contenidas en los artículos son de entera responsabilidad de los autores. El contenido total de los números o suplementos de la revista, está protegido bajo Licencia Creative Commons Reconocimiento-NoComercial-CompartirIgual 4.0 Internacional, por lo que no pueden ser empleados para usos comerciales, pero sí para fines educativos. Sin embargo, por favor, mencionar como fuente a la revista Actualidades Biológicas y enviar una copia de la publicación en que fue reproducido el contenido.