Utilidad de las técnicas moleculares aplicadas al diagnóstico de Babesia bovis y Babesia bigemina en Ganado Bovino: Revisión Sistemática

Autores/as

  • Natalia María Guevara A. Universidad de Antioquia
  • Lina María Rivas J. Universidad de Chile
  • Leonardo Alberto Ríos O. Universidad de Antioquia

Palabras clave:

Babesia , bovinos, reacción en cadena de la polimerasa, técnicas y procedimientos diagnósticos, western blotting

Resumen


INTRODUCCIÓN Existen numerosos métodos microscópicos, serológicos y moleculares para el diagnóstico de la babesiosis; sin embargo, las técnicas moleculares han ganado especial interés porque permiten la detección del material genético en bajas concentraciones, y en ocasiones, la discriminación de especie. OBJETIVO Describir la utilidad de las principales técnicas moleculares aplicadas al diagnóstico de infecciones por Babesia bovis y Babesia bigemina en bovinos. MATERIALES Y MÉTODOS Se realizó una revisión sistemática de la literatura publicada entre 2006 y 2011 en las bases de datos PubMed, ScienceDirect y Springer Link empleando los términos MeSH: Polymerase Chain Reaction, Reverse Transcriptase Polymerase Chain Reaction, Molecular Diagnostic Techniques, Western Blotting, Microarray Analysis, Cattle, Babesia y Babesia bovis. RESULTADOS Se obtuvieron 299 artículos relacionados, de los cuales fueron seleccionados 28 de acuerdo con los criterios de inclusión. Las técnicas moleculares más empleadas fueron la pcr  y sus variantes y el RLB; en menor proporción se emplearon el LAMP y el Western Blot. Se describe brevemente cada técnica, sus aplicaciones en el diagnóstico de infecciones por B. bovis y B. bigemina en bovinos y algunos aspectos a considerar para la correcta aplicación; así mismo, se analiza el marcador molecular, el método de extracción de ácidos nucléicos empleado y la discriminación geográfica del uso de las técnicas. CONCLUSIONES Las técnicas moleculares tienen la capacidad de detectar infecciones por B. bovis y B. bigemina con gran especificidad. Además, permite realizar estudios sobre la biología de los microorganismos, epidemiológicos, filogenéticos y de inmunuzación.
|Resumen
= 192 veces | PDF
= 316 veces|

Descargas

Los datos de descargas todavía no están disponibles.

Métricas

Cargando métricas ...

Biografía del autor/a

Natalia María Guevara A., Universidad de Antioquia

Microbióloga y Bioanalista. Estudiante Maestría en Microbiología y Bioanálisis, énfasis Hematología. Universidad de Antioquia.

Lina María Rivas J., Universidad de Chile

Microbióloga y Bioanalista. Estudiante Magíster en Ciencias Biológicas y Médicas Mención Microbiología. Universidad de Chile. Santiago (Chile). 

Leonardo Alberto Ríos O., Universidad de Antioquia

Profesor Asociado. Grupo de Investigación en Microbiología Veterinaria. Escuela de Microbiología. Universidad de Antioquia.

Citas

Bock R, Jackson L, de Vos A, Jorgensen W. Babesiosis of cattle. Parasitology. 2004;129 Suppl:S247-69.

Bose R, Jorgensen WK, Dalgliesh RJ, Friedho! KT, de Vos AJ. Current state and future trends in the diagnosis of babesiosis. Vet Parasitol. 1995;57(1-3):61-74.

Almeria S, Castella J, Ferrer D, Ortuno A, Estrada-Pena A, Gutierrez JF. Bovine piroplasms in Minorca (Balearic Islands, Spain): a comparison of PCR-based and light microscopy detection. Vet Parasitol. 2001;99(3):249-59.

Domínguez-Alpizar J, Rodríguez-Vivas I, Oura C, Cob-Galera L. Determinación de la especificidad y sensibilidad de las técnicas de Ensayo Inmunoenzimático indirecto y de inmuno"uorescencia indirecta para el diagnóstico de Babesia bovis. Rev Biomed. 1995;6(1):17-23.

Papadopoulos B, Brossard M, Perie NM. Piroplasms of domestic animals in the Macedonia region of Gree-ce. 2. Piroplasms of cattle. Vet Parasitol. 1996;63(1-2):57-66.

Figueroa JV, Chieves LP, Johnson GS, Buening GM. Multiplex polymerase chain reaction based assay for the detection of Babesia bigemina, Babesia bovis and Anaplasma marginale DNA in bovine blood. Vet Parasitol. 1993;50(1-2):69-81.

AbouLaila M, Yokoyama N, Igarashi I. Development and evaluation of a nested PCR based on spherical body protein 2 gene for the diagnosis of Babesia bovisinfection. Vet Parasitol. 2010;169(1-2):45-50.

AbouLaila M, Yokoyama N, Igarashi I. Development and evaluation of two nested PCR assays for the detection of Babesia bovis from cattle blood. Vet Parasitol. 2010;172(1-2):65-70.

Adham F, Abd-el-Samie E, Gabre R, el-Hussein H.Detection of tick blood parasites in Egypt using PCR assay I--Babesia bovis and Babesia bigemina. Parasitol Res. 2009;105(3):721-30.

Altangerel K, Alhassan A, Iseki H, Sivakumar T, Boldbaatar D, Yokoyama N, et al. Evaluation of Babesia bigemina 200 kDa recombinant antigen in enzyme-linked immunosorbent assay. Parasitol Res. 2009;105(1):249-54.

Awad H, Antunes S, Galindo RC, do Rosário VE, de la Fuente J, Domingos A, et al. Prevalence and genetic diversity of Babesia and Anaplasma species in cattle in Sudan. Veterinary Parasitology. 2011;In Press, Corrected Proof.

Buling A, Criado-Fornelio A, Asenzo G, Benitez D, Barba-Carretero JC, Florin-Christensen M. A quantitative PCR assay for the detection and quantification of Babesia bovis and B. bigemina. Vet Parasitol. 2007;147(1-2):16-25.

Criado-Fornelio A, Buling A, Asenzo G, Benitez D, Florin-Christensen M, Gonzalez-Oliva A, et al. Development of "uorogenic probe-based PCR assays for the detection and quantification of bovine piroplasmids. Vet Parasitol. 2009;162(3-4):200-6.

Durrani A, Kamal N. Identification of ticks and detection of blood protozoa in friesian cattle by polmerase chain reacton test and estimation of blood parameters in district Kasur, Pakistan. Trop Anim Health Prod. 2008;40(6):441-7.}

Hilpertshauser H, Deplazes P, Meli ML, Hofmann-Lehmann R, Lutz H, Mathis A. Genotyping of Babesia bigemina from cattle from a non-endemic area (Switzerland). Veterinary Parasitology. 2007;145(12):59-64.

Iseki H, Alhassan A, Ohta N, Thekisoe OMM, Yoko-yama N, Inoue N, et al. Development of a multiplex loop-mediated isothermal amplification (mLAMP) method for the simultaneous detection of bovine Babesia parasites. Journal of Microbiological Methods. 2007;71(3):281-7.

Kim C, Iseki H, Herbas MS, Yokoyama N, Suzuki H, Xuan X, et al. Development of TaqMan-based realtime PCR assays for diagnostic detection of Babesia bovis and Babesia bigemina. Am J Trop Med Hyg. 2007;77(5):837-41.

Martins T, Pedro O, Caldeira R, do Rosario V, Neves L, Domingos A. Detection of bovine babesiosis in Mozambique by a novel seminested hot-start PCR method. Vet Parasitol. 2008;153(3-4):225-30.

Martins T, Neves L, Pedro O, Fafetine J, Do Rosario V, Domingos A. Molecular detection of Babesiaspp. and other haemoparasitic infections of cattle in Maputo Province, Mozambique. Parasitology. 2010;137(6):939-46.

Oliveira MC, Oliveira-Sequeira TC, Regitano LC, Alencar MM, Neo TA, Silva AM, et al. Detection of Babesia bigemina in cattle of diferent genetic groups and in Rhipicephalus (Boophilus) microplus tick. Vet Parasitol. 2008;155(3-4):281-6.

Petrigh R, Ruybal P, Thompson C, Neumann R, Moretta R, Wilkowsky S, et al. Improved molecular tools for detection of Babesia bigemina. Ann N Y Acad Sci. 2008;1149(1):155-7.

Ramos CA, Araujo FR, Souza, II, Bacanelli G, Luiz HL, Russi LS, et al. Realtime polymerase chain reaction based on msa2c gene for detection of Babesia bovis. Vet Parasitol. 2011;176(1):79-83.

Salih D, El Hussein A, Seitzer U, Ahmed J. Epidemiological studies on tick-borne diseases of cattle in Central Equatoria State, Southern Sudan. Parasitol Res. 2007;101(4):1035-44.

Silva M, Henriques G, Sanchez C, Marques P, Sua-rez C, Oliva A. First survey for Babesia bovis and Babesia bigemina infection in cattle from Central and Southern regions of Portugal using serological and DNA detection methods. Vet Parasitol. 2009;166(12):66-72.

Simuunza M, Weir W, Courcier E, Tait A, Shiels B. Epidemiological analysis of tick-borne diseases in Zambia. Vet Parasitol. 2011;175(3-4):331-42.

Tsai Y-L, Chomel BB, Chang C-C, Kass PH, Conrad PA, Chuang S-T. Bartonella and Babesia infections in cattle and their ticks in Taiwan. Comparative Immunology, Microbiology and Infectious Diseases. 2011;34(2):179-87.

Wilkowsky S, Moretta R, Mosqueda J, Gil G, Echaide I, Lia V, et al. A new set of molecular markers for the genotyping of Babesia bovis isolates. Vet Parasitol. 2009;161(1-2):9-18.

Yamada S, Konnai S, Imamura S, Simuunza M, Chembensofu M, Chota A, et al. PCR-based detection of blood parasites in cattle and adult Rhipicephalus appendiculatus ticks. Vet J. 2009;182(2):352-5.

Altay K, Aydin MF, Dumanli N, Aktas M. Molecular detection of Theileria and Babesia infections in cattle. Vet Parasitol. 2008;158(4):295-301.

García-Sanmartín J, Nagore D, García-Pérez A, Juste R, Hurtado A. Molecular diagnosis of Theileria and Babesia species infecting cattle in Northern Spain using reverse line blot macroarrays. BMC Vet Res. 2006;2(16):1-7.

M’ghirbi Y, Hurtado A, Barandika J, Khlif K, Ketata Z, Bouattour A. A molecular survey of Theileria and Babesia parasites in cattle, with a note on the distribution of ticks in Tunisia. Parasitol Res 2008;103(2):435-42.

Silva M, Marques P, Oliva A. Detection of Babesiaand Theileria species infection in cattle from Portugal using a reverse line blotting method. Veterinary Parasitology. 2010;174(3-4):199-205.

Salih D, El Hussein A, Ahmed J, Seitzer U. Comparison between reverse line blot and enzyme-linked immunosorbent assay in diagnosis of major tick-borne diseases of cattle in Southern Sudan. Transbound Emerg Dis 2010;57(1-2):61-2.

Borgonio V, Mosqueda J, Genis A, Falcon A, Alvarez J, Camacho M, et al. msa-1 and msa-2c gene analysis and common epitopes assessment in Mexican Babesia bovis isolates. Ann N Y Acad Sci. 2008;1149:145-8.

Lodish H, Berk A, Matsudaira P, Darnell J. Biologia celular y molecular. 5ª ed. Madrid: Panamericana; 2005.

Karp G. Cell and Molecular Biology: Concepts and Experiments. 6ª ed. United States: John Wiley & Sons; 2010. 37. A. LJyH. Biología Molecular e Ingeniería Genética: Conceptos Técnicas y Aplicaciones en Ciencias de la Salud. Elservier, editor. Madrid: España; 2001.

Walker J, Rapley R. Molecular biology and Biotechonology. 5ª ed ed. Cambridge, UK: Royal Society of Chemistry; 2009.

Mori Y, Nagamine K, Tomita N, Notomi T. Detection of loop-mediated isothermal amplification reaction by turbidity derived from magnesium pyrophosphate formation. Biochem Biophys Res Commun. 2001;289(1):150-4.

Notomi T, Okayama H, Masubuchi H, Yonekawa T, Watanabe K, Amino N, et al. Loop-mediated isothermal ampli!cation of DNA. Nucleic Acids Res. 2000;28(12):E63.

Gubbels J, de Vos A, van der Weide M, Viseras J, Schouls L, de Vries E, et al. Simultaneous Detection of Bovine Theileria and Babesia Species by Reverse Line Blot Hybridization. J Clin Microbiol. 1999;37(6):1782–9.

Hunt P. Molecular diagnosis of infections and resistance in veterinary and human parasites. Vet Parasitol. 2011;180(1-2):12-46.

Sambrook D, Rusell W. Molecular Cloning: A laboratory Manual. 3ª ed. United States: Cold Spring Harbor Laboratory Press; 2001.

U.S. Preventive Services. Guia de actividades preventivas en la práctica médica. Madrid: Díaz de Santos; 1992.

Costa-Junior LM, Rabelo EM, Martins Filho OA, Ri-beiro MF. Comparison of di"erent direct diagnostic methods to identify Babesia bovis and Babesia bigemina in animals vaccinated with live attenuated parasites. Vet Parasitol. 2006;139(1-3):231-6.

Salem G, Liu X, Johnsrude J, Dame J, Roman Reddy G. Development and evaluation of an extra chromosomal DNA-based PCR test for diagnosing bovine ba-besiosis. Mol Cell Probes. 1999;13(2):107-13.

Wilkowsky S, Farber M, Gil G, Echaide I, Mosqueda J, Alcaraz E, et al. Molecular characterization of babesia bovis strains using PCR restriction fragment length polymorphism analysis of the msa2-a/b genes. Ann N Y Acad Sci. 2008;1149:141-4.

Edelhofer R, Müller A, Schuh M, Obritzhauser W, Kanout A. Differentiation of Babesia bigemina, B. bovis, B. divergens and B. major by Western blotting-first report of B. bovis in Austrian cattle. Parasitol Res. 2004;92(5):433-5.

Greenspoon S, Scarpetta MA, Drayton M, Turek S.QIAamp Spin Columns as a Method of DNA Isolation for Forensic Casework. J Forensic Sci. 1998;43(5):1024-30.

Descargas

Publicado

2012-08-25

Cómo citar

Guevara A., N. M., Rivas J., L. M., & Ríos O., L. A. (2012). Utilidad de las técnicas moleculares aplicadas al diagnóstico de Babesia bovis y Babesia bigemina en Ganado Bovino: Revisión Sistemática. Hechos Microbiológicos, 2(2), 65–78. Recuperado a partir de https://revistas.udea.edu.co/index.php/hm/article/view/12651

Número

Sección

Revisiones sistemáticas

Artículos similares

1 2 3 4 5 6 > >> 

También puede Iniciar una búsqueda de similitud avanzada para este artículo.