Evaluación de tres protocolos de tratamiento hormonal sobre el diámetro de ovocitos de sabaleta Brycon henni
DOI:
https://doi.org/10.17533/udea.rccp.324380Palabras clave:
diámetro ovocitos, extracto hipofisiario, hidrolizados de vísceras de peces, reproducciónResumen
El estudio fue realizado en el Municipio de San Carlos (Antioquia, Colombia), por la Facultad de Ciencias Agrarias de la Universidad de Antioquia, en convenio con la Corporación CORNARE, ISAGEN, durante la temporada reproductiva Mayo-Julio de 2008. 12 hembras y 24 machos de sabaleta Brycon henni de aproximadamente 100 g de peso corporal y 20 cm de longitud estándar, provenientes de un lote de 320 reproductores capturados del ambiente natural en Agosto del 2007 y mantenidos en cautiverio en un estanque de tierra de 200 m², fueron seleccionados por sus características externas de madurez sexual como vientre abultado, papila genital enrojecida y expulsión de semen después de leve presión sobre la cavidad celómica. Además como carácter de dimorfismo sexual se consideró para las hembras la presencia de aleta anal lisa o con espinaciones en máximo el 50% de su longitud, mientras que en los machos es rugosa en toda su extensión. También se tuvieron en cuenta características internas, en las hembras se realizó biopsia ovárica por aspiración de una muestra de ovocitos para observar la posición de sus núcleos y medición del de diámetro.. Las hembras fueron seleccionadas con la condición que presentaran ovocitos con diámetros superiores a 900 μm. Los animales fueron distribuidos para recibir uno de tres tratamientos, T1 Extracto de Hipófisis de Carpa (Argent, USA) (EHC), n=4; T2 Ovopel (Sigma Co., St Louis, Missouri), n=4; T3 Ovaprim (Syndel Laboratories Ltd, Vancouver, BC Canadá), n=4, durante cuatro fechas de muestreo y fertilizadas cada una con el semen de dos machos, inyectados previamente con EHC. 11 de las 12 hembras respondieron a los tratamientos y presentaron diámetros ovocitarios promedio de 1428.8 y 1679.8 (T1), 1531.2 y 1879.2 (T2) y de 1712.8 a 1803.3 (T3), antes y después del tratamiento hormonal, respectivamente.
Se observaron diferencias significativas al interior del T1 y T2 (p 0.05), pero no en el T3. La distribución de frecuencias del diámetro de los ovocitos presentó en T1, dos modas antes del tratamiento hormonal y dos después del tratamiento hormonal (bimodal); T2, dos modas antes y una después (bimodal y unimodal) y T3, dos antes y dos después (bimodal). Los porcentajes de fertilización fueron bajos en el T1, pero se presentaron altos porcentajes en T2 y T3 hasta las 12 h de incubación de los huevos.
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Citas
Álvarez LF y Duque JP. La sabaleta y su cultivo en estanques. Seminario (Zootecnia); Medellín:Facultad de Ciencias Agropecuarias,Universidad Nacional de Colombia;1989. P.1-34 .
Andrade Talmelli EFA, Kavamoto EM, Narahara MY, Fenerich-Verani, Reprodução induzida da piabanha, Brycon insignis, mantida em cativeiro. Rev Brás Zootec2002;31:803-811. DOI: https://doi.org/10.1590/S1516-35982002000400001
Antoniuti DM Naraha MY, Romagosa E. Reproducao induzida ecusto operacional de producao de alevinosde curimbata, Prochilodus scrofa (Steindachener, 1881). B Inst Pesca Sao Paulo 1995;22:41-47.
Arias CJA, Zaniboni E, Aya BE Indicadores Del ciclo reproductivo Del Yamú Bricon amazonicus, em cautiverio. Revista Orinoquia 2006;10:24-34. DOI: https://doi.org/10.22579/20112629.215
Beltrán CN, Beltrán I, Sierra R. Notas preliminares sobre la reproducción y cultivo de la sabaleta (Brycon henni, Eigenman 1913). Inderena, 1978:27p.
Berlinsky DL, Smith T IJ, McVey DC, Jenkins WE, Denson MR, et al. Broodstock management and spawning of southern fl ounder, Paralichthys lethostigma Aquaculture 1998;176: 87-99. DOI: https://doi.org/10.1016/S0044-8486(99)00053-8
Brzuska E. Artifcial spawning of European catfsh Silurus glanis L.: differences between propagation results after stimulation of ovulation with carp pituitary and Ovopel. Aquac Res 2001;32:11-19. DOI: https://doi.org/10.1046/j.1365-2109.2001.00520.x
Brzusca E, Bialowas H. Artifi cial spawning of carp, Cyprinus carpio (L.) Aquac Res 2002; 33:753-765. DOI: https://doi.org/10.1046/j.1365-2109.2002.00714.x
Brzuska E. Artifi cial spawning of female Polish line 3 carp (Cyprinus carpio L.) after treatment with pituitary homogenate and/or Ovopel. Aquaculture Research. 2003;34: 1321-1327. DOI: https://doi.org/10.1046/j.1365-2109.2003.00944.x
Brzuska E. Artifi cial spawning of female Lithuanian strain B carp (Cyprinus carpio L.) after treatment with carp pituitary homogenate, Ovopel or [d-Tle6, ProNHEt9] GnRH-a (Lecirelin). Aquac Res 2006:37: 264-271. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1365-2109.2005.01428.x
Builes J, Uran A. Estudio del ciclo sexual de la sabaleta (Brycon henni 1913) su comportamiento y fecundación artifi cial. Rev Actual Biol 1974; 3: 2-12. DOI: https://doi.org/10.17533/udea.acbi.330722
Builes J, Lara L. Informe sobre las actividades realizadas durante el año 1980 en el programa de piscicultura agrícola de la sabaleta (Brycon henni). Corpourabá, Medellín, 1980; 310-324.
Das SK. Evaluation of a New Spawning Agent, Ovopel inInduced Breeding of Indian Carps. Asian Fish Sci 2004;17: 313-322. DOI: https://doi.org/10.33997/j.afs.2004.17.4.004
Flórez Brand, P.E. Estudio biológico-pesquero preliminar de tres especies icticas del alto del Río Cauca Embalse de Salvajina. Rev Cespedesia 1999; 23:47-61.
Forniés MA, Mañanós E, Carrillo M, Rocha A, Laureau S, et al. Spawning induction of individual European sea bass femalesžDicentrarchus labrax/using different GnRHa-delivery systems. Aquaculture 2001;202: 221-234. DOI: https://doi.org/10.1016/S0044-8486(01)00773-6
Gomiero LM, Braga FMS. Gonadossomatic relation and reproductive strategy of Brycon opalinus (Cuvier, 1819) in the Serra do Mar State Park -Núcleo Santa Virgínia, Atlantic Forest, Brazil. Braz J Biol 2007;67: 727-733. DOI: https://doi.org/10.1590/S1519-69842007000400020
Gomiero LM, Braga FMS. Reproduction of Pirapitinga do Sul (Brycon opalinus Cuvier, 1819) in the Parque Estadual da Serra do Mar-Núcleo Santa Virgínia, São Paulo, Brazil. Braz J Biol 2007; 67: 541-549. DOI: https://doi.org/10.1590/S1519-69842007000300021
Haddy JA, Pankhurst NW. The effi cacy of exogenous hormones in stimulating changes in plasma steroids and ovulation in wild black bream Acanthopagrus butcheri is improved by treatment at capture. Aquaculture 2000;191: 351-366. DOI: https://doi.org/10.1016/S0044-8486(00)00445-2
Honji RM, Narcizo AM, Boella MI. Patterns of oocyte development in natural habitad and captive Salminus hilarii Valenciennes. Fish Physiol Biochem 2009;35:109-123. DOI: https://doi.org/10.1007/s10695-008-9239-9
Ingram B, Sungan S, Gooley G, Sim SY, Tinggi D, et al. Induced spawning, larval development and rearing of two indigenous Malaysian mahseer, Tor tambroides and T. douronensis, Aquac Res 2005; 36:1001-1014. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1365-2109.2005.01309.x
Ingram B, Sungan S, Tinggi D, Sim SY, De Silva S. Breeding performance of Malaysian mahseer, Tor tambroides and T. douronensis broodfi sh in captivity, Aquac Res 2007; 38:809-818. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1365-2109.2007.01716.x
Isaza BM. Ensayo de cultivo de sabaleta Brycon fowlerien Urabá. Trabajo de investigación. Departamento de Biología, Universidad de Antioquia, Medellín, 1983. 83p.
Kucharczyk D, Kujawa R, Mamcarz A, Wyszomirska E, Ulikowsky D. Induced spawning in perch, Perca fl uviatilis L. using FSH and LH with pimozide or metoclopramide. Aquac Res 1998;29:131-136. DOI: https://doi.org/10.1046/j.1365-2109.1998.00949.x
Kucharczyk D, Kujawa R, Mamcarz A, Wyszomirska E, Ulikowsky D. Artifi cial spawning of ide (Leuciscus idus) under controlled conditions. EJPAU. Electronic Journal of Polish Agricultural Universities. 1999; (noviembre de 2007)URL: http://www.ejpau.media.pl/volume2/issue2/fi sheries/art-05.html.
Kucharczyk D, Szczerbowski A, Luczynski MJ, Kujawa R, Mamcarz A, et. al. Artifi cial spawning of Eurasian perch, Perca fl uviatilis L. using Ovopel. Arch Pol Fish 2001; 9: 39-49.
Martínez OH, Vásquez GZ. Aspectos reproductivos de la sabaleta Bryconhenni (Pisces Characidae), en el embalse La Salvajina, Colombia. Rev Asoc Colomb Ictiol 2001;4:75-82.
Mikolajczyk T, Roelants I, Epler P, Ollevier F, Chyb J, et al. Modifi ed absorption of sGNRH-a following rectal and oral delivery to common carp, Cyprinus carpio L. Aquaculture2002; 203: 375-388. DOI: https://doi.org/10.1016/S0044-8486(01)00637-8
Narahara, MY, Talmeli A, Kavamoto EFE, Godinho HM. Reprodução induzida da pirapitinga do sul, Brycon opalinus, mantida em condições de confi namento. Rev Bras Zootec 2002; 31:1070-1075. DOI: https://doi.org/10.1590/S1516-35982002000500002
Nuñez J, Dugue R, Corcuy NA, Duponchelle F, Renno J, et al. Induced breeding and larval rearing of Surubí, Pseudoplatystoma fasciatum (Linnaeus, 1766), from the Bolivian Amazon. Aquac Res 2008; 39:764-776. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1365-2109.2008.01928.x
Nuñez J, Duponchelle F. Towards a universal scale to assess sexualmaturation and relatedlife history traits in oviparous teleost fi shes. Fish Physiol Biochem 2009;35:167-180. DOI: https://doi.org/10.1007/s10695-008-9241-2
Montoya A, Carrillo LM, Olivera-Angel M. Algunos aspectos biológicos y del manejo en cautiverio de la sabaleta Brycon henni Eigenmann, 1913 (Pisces Characidae). Rev Colomb Cienc Pecua 2006;19: 180-185.
Pankhurst N, Thomas P. Maintenance at elevated temperature delays the steroidogenic and ovulatory responsiveness of rainbow trout Oncorhynchus mykissto luteinizing hormone releasing hormone analogue. Aquaculture 1998;166:163-177. DOI: https://doi.org/10.1016/S0044-8486(98)00284-1
Pardo S, Arias JA, Suárez-Mahecha H, Cruz-Casallas P, Vasquez-Torres W, et al. Inducción a la maduración fi nal y ovulación del Yamú Brycon henni con EPC y mGnRHa. Rev Colomb Cienc Pecua 2006; 19:160-166.
Perdomo JM. La sabaleta (Brycon henni, Eigenman 1913). Observaciones bioecológicas y su importancia como especie de cultivo. Rev div pesq 1978; 11:1-46.
Romagosa E, Narahara MY, Borella MI, Fenerich VN. Seleção e caracterização de fêmeas de matrinxã, Brycon cephalus induzidas a reprodução. Bo Inst Pesca 2001; 27:139-147.
Szabo ́ T, Medgyasszay C, Horváth L. Ovulation induction in nase (Chondrostoma nasus,Cyprinidae) using pituitary extract or GnRH analogue combined with domperidone. Aquaculture. 2002;203: 389-395. DOI: https://doi.org/10.1016/S0044-8486(01)00635-4
Ulikowski D. European Catfi sh (Silurus glanis L.). Reproduction outside of the spawning season. Arch Pol Fish 2004;12: 121-131.
Yaron Z. Endocrine control of gametogenesis and spawing induction in the carp. Aquaculture. 1995;129: 49-73. DOI: https://doi.org/10.1016/0044-8486(94)00229-H
Zakes Z , Demska K . Artifi cial Spawning of Pikeperch (Sander lucioperca L.), Estimulated with Human Chorionic Gonadotropin (HCG) and Mammalian GnRH Analogue with a Dopamine Inhibitor. Arch Pol Fish 2005; 13:1:63-75.
Zanoboni Filho E, De Campos Barbosa ND. Priming hormone administration to induce spawning of some brazilian migratory fi sh. REVISTA 1996;vol:63-67.
Zapata L, Vanegas R. Aspectos importantes sobre la reproducción inducida y el metabolismo de las gónadas de sabaleta Brycon henni. Trabajo de grado, Facultad de Ciencias Exactas y Naturales, Universidad de Antioquia, Medellín, 1993. 67p.
Zohar Y, Mylonas C. Endocrine manipulations of spawning in cultured fi sh: from hormones to genes. Aquaculture 2001; 197: 99–136. DOI: https://doi.org/10.1016/B978-0-444-50913-0.50009-6
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