Efectos inmunológicos de la autohemovacunación y la vacunación autógena en bovinos con el virus de la papilomatosis cutánea

Autores/as

  • Andres Suárez-Usbeck Escuela Superior Politécnica de Chimborazo - ESPOCH https://orcid.org/0000-0002-6626-8224
  • Pamela Vinueza Escuela Superior Politécnica de Chimborazo - ESPOCH https://orcid.org/0000-0001-5880-1706
  • Marilyn Mora Escuela Superior Politécnica de Chimborazo - ESPOCH
  • Anahí Carrasco Grupo de Investigación Ecuatoriano en Medicina y Sanidad Animal
  • Tirsa Echeverria Escuela Superior Politécnica de Chimborazo - ESPOCH
  • Andrea Vela Universidad Técnica de Ambato - UTA https://orcid.org/0000-0002-2557-855X

DOI:

https://doi.org/10.17533/udea.rccp.e355957

Palabras clave:

autógeno, autohemovacuna, efectos inmunológicos, ganado, IL-6, leucocito, papilomavirus, PCR, vacuna, virus del papiloma bovino

Resumen

El papilomavirus es un virus conocido por desencadenar el desarrollo de tumores benignos en hospedadores mamíferos. Existen diversos enfoques terapéuticos para tratar la papilomatosis cutánea resultante del virus de la papilomatosis bovina (VPB), y la autohemovacuna (AHV) y la vacuna autógena (ATV) son métodos que se destacan entre todos ellos. El objetivo de la investigación fue examinar los efectos inmunológicos de la AHV y la ATV en el ganado bovino en el Ecuador. Se diagnosticaron 150 bovinos con síntomas de papilomatosis cutánea mediante PCR y se distribuyeron en diferentes grupos. Para crear las vacunas, se utilizaron 50 bovinos en el protocolo AHV, n=25 con dosis de 20 mL y n=25 con dosis de 10 mL de sangre no tratada; Para el protocolo ATV, se utilizaron 50 bovinos, n=25 se utilizaron con dosis de 10 mL y n=25 con dosis de 20 mL de vacunas autógenas preparadas. Mientras que los bovinos restantes (n=50) sirvieron como grupo de control (C). Las vacunas ATV se prepararon agregando 0,5% de formalina a la suspensión, que se complementó con penicilina cristalina. Las vacunas se almacenaron a 4°C hasta su uso. Las vacunas (AHV y ATV) se administraron 4 veces de forma subcutánea con intervalos de 1 semana en dosis de 20 y 10 mL, respectivamente a cada grupo tratamiento. Se realizaron análisis hematológicos e inmunológicos recopilando muestras de sangre antes y después de cada vacunación. Los resultados demostraron en ATV (10 y 20 mL) y AHV (10 y 20 mL) un notable aumento en leucocitos (14,5; 14; 15,4; 16 103/mm3), linfocitos (55; 52; 58; 62 %), e interleucina-6 (0,85; 0,80; 0,95; 0,97 ng/L), neutrófilos (33; 35; 44; 40%) y monocitos (5; 8; 12; 13 %) en comparación con C+ (Leu: 13 103/mm3; Lym: 50 %; IL-6: 0,54 ng/L; Neu: 34%; Mon: 6,5%). En las vacunas AHV y ATV, de manera alentadora, en el primer mes después de la vacunación, se evidenciaron síntomas clínicos de regresión en el papiloma cutáneo. En conclusión, la papilomatosis bovina representa una condición de considerable importancia económica en la ganadería lechera. El estudio destaca la vacunación autógena como una intervención terapéutica práctica y efectiva, que promueve eficazmente la regresión de las lesiones, especialmente mediante la estimulación de la producción de IL-6 y linfocitos en bovinos infectados con papilomavirus.

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Biografía del autor/a

Andres Suárez-Usbeck, Escuela Superior Politécnica de Chimborazo - ESPOCH

Chief of Scientific Direction and Research in the field of animal production and health at CCLabs, Ecuador.
Professor at UNAM, Mexico.
LinkedIn Profile: Andrés Suárez Usbeck

Pamela Vinueza, Escuela Superior Politécnica de Chimborazo - ESPOCH

Facultad de Ciencias Pecuarias, ESPOCH, Ecuador.
Grupo de Investigación en Ciencias Veterinarias (GICV), ESPOCH, Ecuador.

Marilyn Mora, Escuela Superior Politécnica de Chimborazo - ESPOCH

Facultad de Ciencias Pecuarias, ESPOCH, Ecuador

Anahí Carrasco, Grupo de Investigación Ecuatoriano en Medicina y Sanidad Animal

Grupo de Investigación Ecuatoriano en Medicina y Sanidad Animal (GIEMSA, IIEMSA), Ecuador.

Tirsa Echeverria, Escuela Superior Politécnica de Chimborazo - ESPOCH

Grupo de Investigación Ecuatoriano en Medicina y Sanidad Animal (GIEMSA, IIEMSA), Ecuador

Andrea Vela, Universidad Técnica de Ambato - UTA

Universidad Técnica de Ambato, UTA, Ecuador

Citas

Aksoy P, Gottschalk EY, Meneses PI. HPV entry into cells. Mutat Res Rev Mutat Res 2017; 772:13-22. doi: 10.1016/j.mrrev.2016.09.004

Alcigir ME, Atalay Vural S, Timurkan MO. Investigation of E2, E5 and E6 gene expression and DNA in situ fragmentation findings associated with progressive and regressive changes in benign neoplastic cutaneous lesions arising naturally from bovine papillomavirus-1 infection. Medycyna Weterynaryjna 2016; 72:549–557. https://doi.org/10.21521/mw.5562

Alcigir ME, Timurkan MO. The association between insulin- like growth factors I, II and bovine papillomavirus type-1 expressions in naturally occuring bovine fibropapilloma cases. Ankara Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi 2018; (65) 2:115–122. https://dergipark.org.tr/en/download/article-file/644923

Atasever A, Cam Y, Atalay O. Bir sığır sürüsünde deri papillomatosis olguları. Ankara Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi 2005; 52:197–200. https://teav.ankara.edu.tr/xmlui/bitstream/handle/20.500.12575/59133/1810.pdf?sequence=1

Aydin H, Gelen V, Şengül E, Yildirim S. Immunological effects of autogenous vaccine administration in cattle with cutaneous papillomatosis. Acta Vet Eurasia 2020; 46, 98-103. https://doi: 10.5152/actavet.2020.20002

Dagalp SB, Dogan F, Farzani TA, Salar S, Bastan A. The genetic diversity of bovine papillomaviruses (BPV) from different papillomatosis cases in dairy cows in Turkey. Arch Virol 2017; 162:1507–1518. https://doi.org/10.1007/s00705-017-3258-8

Dal Pozzo F, Thiry E. Antiviral chemotherapy in veterinary medicine: current applications and perspectives. Rev Sci Tech 2014; 33(3):791–797. https://doi.org/10.20506/rst.33.3.2318

Daudt C, Da Silva FR, Lunardi M, Alves CB, Weber MN, Cibulski SP, Canal CW. Papillomaviruses in ruminants: An update. Transbound Emerg Dis 2018; 65(5):1381–1395. https://doi.org/10.1111/tbed.12868

Doğan E, Erdağ D, Doğan AN, Kiliçle PA, Doğan A. Treatment of bovine skin papillomatosis with gasoline. Pak Vet J 2021; 41(1): 169-172. http://dx.doi.org/10.29261/pakvetj/2020.069

Fernandes KP, Alfieri AA, Darold GM, Boabaid FM, Agnol AM, Lunardi M. Case report: Mixed infection of bovine papillomaviruses associated with squamous papilloma of the upper alimentary tract in a dairy cow. Front Vet Sci 2022; 9:1020166. https://doi.org/10.3389/fvets.2022.1020166

Khattab MS, Ali AM, Osman AH, AbuBakr HO, Azouz RA, Ramadan ES, Farag HS. Bovine papillomatosis: A serological, hematobiochemical, ultrastructural and immunohistochemical investigation in cattle. Pakistan Vet J 2023; 43(2). https://doi.org/10.29261/pakvetj/2023.023

Knight CG. The association between equine Papillomavirus type 2 and equine Squamous cell carcinomas: a thesis presented in partial fulfilment of the requirements for the degree of Doctor of Philosophy in Veterinary Science at Massey University, Palmerston North, New Zealand. Doctoral dissertation, Massey University; 2015. http://hdl.handle.net/10179/9863

Lacey CJ, Thompson HS, Monteiro EF, O'neill T, Davies ML, Holding FP, Roberts JS. Phase IIa safety and immunogenicity of a therapeutic vaccine, TA-GW, in persons with genital warts. J Infect Dis 1999; 179(3):612–618. https://doi.org/10.1086/314616

Marć MA, Domínguez-Álvarez E, Gamazo C. Nucleic acid vaccination strategies against infectious diseases. Expert Opin Drug Del 2015; 12(12):1851–1865. https://doi.org/10.1517/17425247.2015.1077559

Méndez I, Muñoz FA, González M, Martínez AY, Hernández LE. Características histopatológicas y detección de Papilomavirus en la fibropapilomatosis bovina en el estado de San Luis Potosí, México. Rev Mex Cienc Pecu 2021; 12(1):286–297. https://doi.org/10.22319/rmcp.v12i1.5999

Pathania S, Kumar P, Devi LG, Kumar D, Dhama K, Somvanshi R. Preliminary assessment of binary ethylenimine inactivated and saponized cutaneous warts (BPV-2) therapeutic vaccine for enzootic bovine haematuria in hill cows. Vaccine 2011; 29(43):7296–7302. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2011.07.065

Ranjan R, Ghumman SP, Bhath GR, Singh RS. Efficacy of autogenous vaccine and auto-hemotherapy in bovine cutaneous papillomatosis. Intas Polivet 2013; 14:411–415. Online ISSN: 2249–8796. https://www.entomoljournal.com/archives/2020/vol8issue5/PartL/8-5-280-291.pdf

Saied AA, Metwally AA, Mohamed HM, Haridy MA. The contribution of bovines to human health against viral infections. Environ. Sci. Pollut 2021; 28(34), 46999-47023. https://doi.org/10.1007/s11356-021-14941-z

Saied AA. Regression of bovine cutaneous papillomas via ivermectin-induced immunostimulant and oxidative stress. J. Adv. Vet. Anim 2021; 8(3), 370. https://doi.org/10.5455/javar.2021.h525

Salib FA, Farghali HA. Clinical, epidemiological and therapeutic studies on Bovine Papillomatosis in Northern Oases, Egypt in 2008. Vet World 2011; 4(2):53–59. http://dx.doi.org/10.5455/vetworld.2011.53-59

Skeate JG, Woodham AW, Einstein MH, Da Silva DM, Kast WM. Current therapeutic vaccination and immunotherapy strategies for HPV-related diseases. Hum Vaccines Immunother 2016; 12(6):1418–1429. https://doi.org/10.1080/21645515.2015.1136039

Tozato CC, Lunardi M, Alfieri AF, Otonel RAA, Di Santis GW, de Alcântara BK, Headley SA, Alfieri AA. Teat papillomatosis associated with bovine papillomavirus types 6, 7, 9, and 10 in dairy cattle from Brazil. Braz J Microbiol 2013; 44 (3). https://doi.org/10.1590/S1517-83822013005000057

Ugochukwu IC, Aneke CI, Idoko IS, Sani A, Amoche AJ, Mshiela WP, Ede RE, Ibrahim ND, Njoku CI, Sackey AK. Bovine papilloma: aetiology, pathology, immunology, disease status, diagnosis, control, prevention and treatment: a review. Comp Clin Pathol 2019; 28, 737–745. https://doi.org/10.1007/s00580-018-2785-3

Yildirim Y, Küçük A, Kale M, Hasircioğlu S, Atli K, Saltik HS. Evaluating the Efficiency of Various Treatment Methods in Cattle Cutaneous Papillomatosis. Vet It 2023; 59(4). https://doi.org/10.12834/VetIt.3138.21450.2

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Publicado

2025-03-14

Cómo citar

Suárez-Usbeck, A., Vinueza, P., Mora, M., Carrasco, A., Echeverria, T., & Vela, A. (2025). Efectos inmunológicos de la autohemovacunación y la vacunación autógena en bovinos con el virus de la papilomatosis cutánea. Revista Colombiana De Ciencias Pecuarias. https://doi.org/10.17533/udea.rccp.e355957

Número

Sección

Accepted manuscripts