Presença de Chlamydia abortus em amostras de colostro, leite e secreção vaginal de ovelhas

Autores

  • María Guadalupe Martínez-Serrano Universidad Nacional Autónoma de México
  • Efrén Díaz-Aparicio Instituto Nacional de Investigaciones Forestales Agrícolas y Pecuarias
  • Gabriela Palomares-Reséndiz Instituto Nacional de Investigaciones Forestales Agrícolas y Pecuarias
  • Jorge Luis Tórtora-Pérez Universidad Nacional Autónoma de México
  • Hugo Ramírez-Álvarez Universidad Nacional Autónoma de México
  • Nieves Ortega-Hernández Universidad de Murcia
  • Jesús Salinas-Lorente Universidad de Murcia
  • José Francisco Morales-Alvarez Instituto Nacional de Investigaciones Forestales Agrícolas y Pecuarias
  • Juan Julio César Cervantes-Morali Universidad Nacional Autónoma de México

DOI:

https://doi.org/10.17533/udea.rccp.v35n2a04

Palavras-chave:

colostro, clamídia, Chlamydia abortus, corrimento vaginal, eliminação vaginal, infecção por clamídia, leite, ovelha, ovino, secreção

Resumo

Antecedentes: A principal via de transmissão da Chlamydia abortus é a ingestão do microrganismo que foi eliminado nas secreções vaginais, membranas placentárias ou abortos que contaminam o meio ambiente e, possivelmente, através do leite e colostro. A eliminação pelas secreções vaginais está bem documentada. No entanto, não há relatos de isolamento e identificação de C. Abortus no colostro ou leite de ovelhas infectadas, por isso é importante verificar se a bactéria pode estar ou não presente nessas secreções, único alimento dos cordeiros. Objetivo: Detectar a presença de C. Abortus no colostro, leite e secreções vaginais de ovelhas com histórico de distúrbios reprodutivos. Métodos: Para isolar e identificar C. Abortus nessas secreções, foram coletados colostro, leite e exsudato vaginal de 66 ovelhas. As amostras foram inoculadas em cultura de células de fibroblastos de camundongo e a presença da bactéria determinada por imunofluorescência direta. Resultados: 19 de 66 amostras de colostro (28,7%), 14 de 66 amostras de leite (21,2%) e 17 de 66 esfregaços vaginais (25,7%) sendo positivos. As 50 amostras positivas para isolamento e detectadas por imunofluorescência, juntamente com as 42 negativas, foram submetidas a qPCR para amplificar um fragmento do gene ompA de C. Abortus. Trinta e oito das 92 amostras processadas por esta técnica foram positivas para C. Abortus. Conclusão: Os resultados do presente estudo demonstraram a presença de C. Abortus em alta proporção no colostro, leite e secreções vaginais de ovelhas infectadas. Este trabalho é o primeiro estudo de campo na literatura científica confirmando a presença de C. Abortus no colostro, o que mostra que a excreção da clamídia por lactogênese pode ocorrer nas primeiras horas após o nascimento.

|Resumo
= 810 veces | PDF (ENGLISH)
= 444 veces| | HTML (ENGLISH)
= 0 veces|

Downloads

Não há dados estatísticos.

Biografia do Autor

María Guadalupe Martínez-Serrano, Universidad Nacional Autónoma de México

Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Universidad Nacional Autónoma de México, Ciudad Universitaria, 04510, Coyoacán, Ciudad de México.

Efrén Díaz-Aparicio, Instituto Nacional de Investigaciones Forestales Agrícolas y Pecuarias

Centro Nacional de Investigación Disciplinaria en Salud Animal e Inocuidad, Instituto Nacional de Investigaciones Forestales Agrícolas y Pecuarias. Carretera Federal México Toluca, km 15.5, Colonia Palo Alto, Cuajimalpa, 05110 Ciudad de México

Gabriela Palomares-Reséndiz, Instituto Nacional de Investigaciones Forestales Agrícolas y Pecuarias

Centro Nacional de Investigación Disciplinaria en Salud Animal e Inocuidad, Instituto Nacional de Investigaciones Forestales Agrícolas y Pecuarias. Carretera Federal México Toluca, km 15.5, Colonia Palo Alto, Cuajimalpa, 05110 Ciudad de México.

Jorge Luis Tórtora-Pérez, Universidad Nacional Autónoma de México

Facultad de Estudios Superiores Cuautitlán, Universidad Nacional Autónoma de México, San Sebastián Xhala, 54714 Cuautitlán Izcalli, Estado de México.

Hugo Ramírez-Álvarez, Universidad Nacional Autónoma de México

Facultad de Estudios Superiores Cuautitlán, Universidad Nacional Autónoma de México, San Sebastián Xhala, 54714 Cuautitlán Izcalli, Estado de México.

Nieves Ortega-Hernández, Universidad de Murcia

Facultad de Veterinaria, Universidad de Murcia, España. Calle Campus Universitario, 7, 30100 Murcia, España.

Jesús Salinas-Lorente, Universidad de Murcia

Facultad de Veterinaria, Universidad de Murcia, España. Calle Campus Universitario, 7, 30100 Murcia, España.

José Francisco Morales-Alvarez, Instituto Nacional de Investigaciones Forestales Agrícolas y Pecuarias

Centro Nacional de Investigación Disciplinaria en Salud Animal e Inocuidad, Instituto Nacional de Investigaciones Forestales Agrícolas y Pecuarias. Carretera Federal México Toluca, km 15.5, Colonia Palo Alto, Cuajimalpa, 05110 Ciudad de México.
Facultad de Estudios Superiores Cuautitlán, Universidad Nacional Autónoma de México, San Sebastián Xhala, 54714 Cuautitlán Izcalli, Estado de México

Juan Julio César Cervantes-Morali, Universidad Nacional Autónoma de México

Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Universidad Nacional Autónoma de México, Ciudad Universitaria, 04510, Coyoacán, Ciudad de México.

Referências

Barati S, Moori-Bakhtiari N, Najafabadi MG, Momtaz H, Shokuhizadeh L. The role of zoonotic chlamydial agents in ruminants abortion. Iranian J of Microbiol 2017; 9(5):288–294. URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/29296274/

Castro N, Capote J, Bruckmaier RM, Argüello A. Management effects on colostrogenesis in small ruminants: A review. J Appl Anim Res 2011; 39(2):85–93. DOI: https://doi.org/10.1080/09712119.2011.581625

Elwell C, Mirrashidi K, Engel J. Chlamydia cell biology and pathogenesis. Nature Rev Microbiol 2016; 14(6):385–400. DOI: https://doi.org/10.1038/nrmicro.2016.30

Escuder VD, Espinosa MI, Rodríguez JM, Fernández L, Pallás ACR. Effect of HTST and holder pasteurization on the concentration of immunoglobulins, growth factors, and hormones in donor human milk. Front Immunol 2018. 9:2222. DOI: https://doi.org/10.3389/fimmu.2018.02222

Escuder VD, Rodríguez JM, Espinosa MI, Corzo N, Montilla A, García SA, Visitación CM, Fontecha J, Serrano J, Fernández L, Pallás ACR. High-temperature short-time and holder pasteurization of donor milk: impact on milk composition. Life 2021; 11(2):114. DOI: https://doi.org/10.3390/life11020114

Livingstone M, Wheelhouse N, Ensor H, Rocchi M, Maley S, Aitchison K, Wattegedera S, Wilson K, Sait M, Siarkou V, Vretou E, Entrican G, Dagleish M, Longbottom D. Pathogenic outcome following experimental infection of sheep with Chlamydia abortus variant strains LLG and POS. PLoS ONE 2017; 12(5):1–19. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0177653

Longbottom D, Coulter LJ. Animal chlamydioses and zoonotic implications. J Comp Pathology 2003; 128(4):217–244. DOI: https://doi.org/10.1053/jcpa.2002.0629

Nietfeld JC. Chlamydial infections in small ruminants. The Veterinary Clinics of North America. Food Anim Practice 2001; 17(2):301–314. DOI: https://doi.org/10.1016/S0749-0720(15)30030-X

Ortega N, Caro M, Gallego C, Murcia-Belmonte A, Alvarez D, del Rio L, Cuello F, Buendía A, Salinas J. Isolation of Chlamydia abortus from a laboratory worker diagnosed with atypical pneumonia. Irish Vet J 2016; 69(8):1-4. DOI: https://doi.org/10.1186/s13620-016-0067-4

Oseikria M, Pellerin J, Rodolakis A, Vorimore F, Laroucau K, Bruyas J, Roux C, Michaud S, Larrat M, Fieni F. Can Chlamydia abortus be transmitted by embryo transfer in goats? Theriogenology 2016 (86): 1482–1488. DOI: http://dx.doi.org/10.1016/j.theriogenology.2016.05.006

Pantchev A, Sting R, Bauerfeind R, Tyczka J, Sachse K. New real-time PCR tests for species-specific detection of Chlamydophila psittaci and Chlamydophila abortus from tissue samples. Vet J 2009; 181(2):145–150. DOI: https://doi.org/10.1016/j.tvjl.2008.02.025

Papp JR, Shewen PE, Gartley CJ. Abortion and subsequent excretion of chlamydiae from the reproductive tract of sheep during estrus. Infect and Immun 1994; 62(9):3786–3792. DOI: https://doi.org/10.1128/iai.62.9.3786-3792.1994

Rocchi MS, Wattegedera S, Meridiani I, Entrican G. Protective adaptive immunity to Chlamydophila abortus infection and control of ovine enzootic abortion (OEA). Vet Microbiol 2009; 135(1–2):112–121. DOI: https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2008.09.030

Rodolakis A, Laroucau K. Chlamydiaceae and chlamydial infections in sheep or goats. Vet Microbiol 2015; 181(1–2):107–118. DOI: https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2015.07.010

Rojas M, Fort M, Bettermann S, Entrocassi C, Costamagna S, Sachse K, Rodríguez M. Detección de Chlamydia abortus en pérdidas reproductivas de bovinos en la provincial de La Pampa, Argentina. Rev Argent Microbiol 2018; 50 (3):269-274. DOI: https://doi.org/10.1016/j.ram.2017.10.002

Salinas J, Sanchez J, Buendia AJ, Souriau A, Rodolakis A, Bernabé A, Cuello F. The LPS localization might explain the lack of protection of LPS-specific antibodies in abortion-causing Chlamydia psittaci infections. Res Microbiol 1994; 145(8). DOI: https://doi.org/10.1016/0923-2508(94)90078-7

Sambrook J, Fritsch EF, MT. Molecular cloning a laboratory manual, Volumes 1, 2 and 3. 2nd ed. Cold Spring Harbor Laboratory Press; 1989; ISBN:0-87969-309-6. URL: https://is.muni.cz/publication/372112/en/Molecular-Cloning-A-laboratory-Manual/Sambrook-Fritsch-Maniatis

Selim A, Manaa E, Waheed R, Alanazi A. Seroprevalence, associated risk factors analysis and first molecular characterization of Chlamydia abortus among Egyptian sheep 2020; 74. DOI: https://doi.org/10.1016/j.cimid.2020.101600

Stuen S, Longbottom D. Treatment and control of chlamydial and rickettsial infections in sheep and goats. Vet Clin N Am-Food Anim Pract 2011; 27(1): 213–233. DOI: https://doi.org/10.1016/j.cvfa.2010.10.017

Thomas R, Davison HC, Wilsmore AJ. Use of the IDEIA ELISA to detect Chlamydia psittaci (ovis) in material from aborted fetal membranes and milk from ewes affected by ovine enzootic abortion. British Vet J 1990; 146(4):364–367. DOI: https://doi.org/10.1016/S0007-1935(11)80031-X

Wattegedra SR, Livingstone M, Maley S, Rocchi M, Lee S, Pang Y, Wheelhouse NM, Aitchison K, Palarea AJ, Buxton D, Longbottom D, Entrican G. Defining immune correlates during latent and active chlamydial infection in sheep. Vet Res 2020; 51(2):75. DOI: https://doi.org/10.1186/s13567-020-00798-6.

Publicado

2022-07-11

Como Citar

Martínez-Serrano, M. G., Díaz-Aparicio, E., Palomares-Reséndiz, G., Tórtora-Pérez, J. L., Ramírez-Álvarez, H., Ortega-Hernández, N., Salinas-Lorente, J., Morales-Alvarez, J. F., & Cervantes-Morali, J. J. C. (2022). Presença de Chlamydia abortus em amostras de colostro, leite e secreção vaginal de ovelhas. Revista Colombiana De Ciencias Pecuarias, 35(3), 165–173. https://doi.org/10.17533/udea.rccp.v35n2a04

Edição

Seção

Original research articles