Eficacia de la planta Contoya (Lobelia decurrens Cav.) para controlar la coccidiosis en terneros
DOI:
https://doi.org/10.17533/udea.rccp.e357379Palabras clave:
control alternativo, biocontrol, planta bioactiva, terneras, eficacia, Eimeria spp, control parasitario, carga parasitaria, fitoquímico, dosis terapéuticaResumen
Antecedentes: El ganado bovino es susceptible a infecciones por protozoarios parásitos, que a menudo requieren tratamientos químicos. Sin embargo, el uso de estos productos puede contaminar el suelo y afectar negativamente la flora y fauna, además de dejar residuos en la leche y la carne, representando un riesgo para los consumidores. Por lo tanto, es crucial buscar alternativas menos dañinas para el ambiente, como el uso de plantas bioactivas. El objetivo de este estudio fue evaluar la eficacia del pulverizado de la planta contoya (Lobelia decurrens Cav.) en dos dosis (1 g/kg vs. 2 g/kg) en el control de la coccidiosis en terneras infectados naturalmente en condiciones de cría extensiva. Métodos: Se formaron grupos de terneras con cargas parasitarias similares (p>0.05) a las que se les administró vía oral pulverizado de la hoja y la flor de la planta contoya. La eficacia se calculó mediante el porcentaje de reducción de ooquistes por gramo de heces utilizando cámara McMaster. Resultados: La dosis de 2 g/kg de mostró un efecto significativamente mayor en la reducción de la carga parasitaria en comparación con la dosis de 1 g/kg (p<0.05). Con una dosis de 1 g/kg, se observó una eficacia mínima del 38.04% al tercer día y una eficacia máxima del 86.93% al día quince. Con la dosis de 2 g/kg, se alcanzó una eficacia mínima del 73.91% al tercer día y una eficacia máxima del 95.45% al día quince. Conclusiones: Estos resultados indican que el uso de contoya, a dosis de 2 g/kg, puede ser una opción eficaz para el control de la coccidiosis en terneras. Esto podría ser ventajoso para los pequeños productores de ganado, proporcionando una alternativa a los fármacos convencionales en términos de costos y el impacto ambiental.
Descargas
Citas
Amoah LE, Kakaney C, Kwansa-Bentum B, Kusi KA. Activity of Herbal Medicines on Plasmodium falciparum Gametocytes: Implications for Malaria Transmission in Ghana. PLoS One 2015; 10(11): e0142587. https://doi.org/10.1371%2Fjournal.pone.0142587
Bangoura B, Bardsley KD. Ruminant coccidiosis. Vet Clin North Am Food Anim Pract. 2020; 36(1): 187-203. https://doi.org/10.1016/j.cvfa.2019.12.006
Beltrán DM, Monteiro LF, Maffini L, Lopez L, Victória H, Barbosa R, Nunes AS, Mendes L, Edesio V, Zanetti WD. Long-term efficacy of toltrazuril in naïve calves prophylactically treated and experimentally infected with Eimeria spp. Parasitol Res. 2022; 121: 2571-2578. https://doi.org/10.1007/s00436-022-07601-9
Burke JM, Miller JE. Sustainable Approaches to Parasite Control in Ruminant Livestock. Vet Clin North Am Food Anim Pract. 2020; 36(1): 89-107. https://doi.org/10.1016/j.cvfa.2019.11.007
Chen MW, Chen WR, Zhang JM, Long XY, Wang YT. Lobelia chinensis: chemical constituents and anticancer activity perspective. Chin J Nat Med. 2014; 12(2): 103-107. https://doi.org/10.1016/S1875-5364(14)60016-9
Choi WH, Lee IA. The anti-tubercular activity of Melia azedarach L. and Lobelia chinensis Lour. and their potential as effective anti-Mycobacterium tuberculosis candidate agents. Asian Pac J Trop Biomed. 2016; 6(10): 830-835. https://doi.org/10.1016/j.apjtb.2016.08.007
Daugschies A, Najdrowski M. Eimeriosis in cattle: Current understanding. J Vet Med B Infect Dis Vet Public Health. 2005; 52(10): 417-427. https://doi.org/10.1111/j.1439-0450.2005.00894.x
El‐Seedi HR, Shaden Khalifa SAM, Mohamed AH, Yosri N, Zhao C, El-Wakeil N, Attia NF, Xu B, AbdElhafez AR, Boskabady MH, Elseedy S, Efferth T, Verpoorte R. Plant Extracts And Compounds For Combating Schistosomiasis. Phytochem Rev.2022; 22: 1691-1806. https://doi.org/10.1007/s11101-022-09836-x
Hayward AD, Pilkington JG, Wilson K, McNeilly TN, Watt KA. Reproductive effort influences intra‐seasonal variation in parasite‐specific antibody responses in wild Soay sheep. Funct Ecol. 2019; 33(7): 1307-1320. https://doi.org/10.1111/1365-2435.13330
Hofmeester TR, Bügel EJ, Hendrikx B, Maas M, Franssen FFJ, Sprong H, Matson KD. Parasite Load and Site-Specific Parasite Pressure as Determinants of Immune Indices in Two Sympatric Rodent Species. Animals 2019; 9(12): 1015. https://doi.org/10.3390%2Fani9121015
Jonsson NN, Piper EK, Gray CP, Deniz A, Constantinoiu CC. Efficacy of toltrazuril 5% suspension against Eimeria bovis and Eimeria zuernii in calves and observations on the associated immunopathology. Parasitol Res. 2011; 109: 113-128. https://doi.org/10.1007/s00436-011-2408-2
Kassai T. Helmintología Veterinaria. 1st ed. España: Editorial Acriba S.A.; 1998.p.296.
Keeton STN, Navarre CB. Coccidiosis in Large and Small Ruminants. Vet Clin North Am Food Anim Pract. 2018; 34(1): 201-208. https://doi.org/10.1016/j.cvfa.2017.10.009
Lillehoj H, Liu Y, Calsamiglia S, Fernandez-Miyakawa ME, Chi F, Cravens RL, Oh S, Gay CG. Phytochemicals as antibiotic alternatives to promote growth and enhance host health. Vet Res. 2018; 49: 76. https://doi.org/10.1186/s13567-018-0562-6
Luo J, Chen QX, Li P, Yu H, Yu L, Lu JL, Yin HZ, Huang BJ, Zhang SJ. Lobelia chinensis Lour inhibits the progression of hepatocellular carcinoma via the regulation of the PTEN/AKT signaling pathway in vivo and in vitro. J Ethnopharmacol. 2024; 318(Pt A): 116886. https://doi.org/10.1016/j.jep.2023.116886
Odden A, Enemark HL, Ruiz A, Robertson LJ, Ersdal C, Nes SK, Tømmerberg V, Stuen S. Controlled efficacy trial confirming toltrazuril resistance in a field isolate of ovine Eimeria spp. Parasit Vectors. 2018; 11: 394. https://doi.org/10.1186/s13071-018-2976-4
Philippe P, Alzieu J, Taylor M, Dorchies P. Comparative efficacy of diclazuril (Vecoxan®) and toltrazuril (Baycox Bovis®) against natural infections of Eimeria bovis and Eimeria zuernii in French calves. Vet Parasitol. 2014; 206(3-4): 129-137. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2014.10.003
Rana MS, Lee SY, Kang HJ, Hur SJ. Reducing Veterinary Drug Residues in Animal Products: A Review. Food Sci Anim Resour. 2019; 39(5): 687-703. https://doi.org/10.5851/kosfa.2019.e65
Ranasinghe S, Armson A, Lymbery AJ, Zahedi A, Ash A. Medicinal plants as a source of antiparasitics: an overview of experimental studies. Pathogens Global Health 2023; 117(6): 535-553. https://doi.org/10.1080/20477724.2023.2179454
Reyna-Cotrina G, Torrel-Pajares T, Rojas-Moncada J, Vargas-Rocha L. The efficacy of Contoya (Lobelia decurrens cav.) in the control of eimeriosis in vivo in rabbits. Journal of the Hellenic Veterinary Medical Society 2024; 75(1). https://doi.org/10.12681/jhvms.34130
Silva F dos S, Albuquerque UP, Costa LM, Lima A. da S, Nascimento ALB do, Monteiro JM. An ethnopharmacological assessment of the use of plants against parasitic diseases in humans and animals.
J Ethnopharmacol. 2014; 155(2): 1332-1341. https://doi.org/10.1016/j.jep.2014.07.036
Stolom S, Oyemitan IA, Matewu R, Oyedeji OO, Oluwafemi SO, Nkeh-Chungag BN, Songca SP, Oyedeji AO. Chemical and biological studies of Lobelia flaccida (C. Presl) A.DC leaf: a medicinal plant used by traditional healers in Eastern Cape, South Africa. Trop J Pharm Res. 2016; 15(8): 1715-1721. https://doi.org/10.4314/tjpr.v15i8.17
Tombak KJ, Budischak SA, Hauck S, Martinez LA, Rubenstein DI. The non-invasive measurement of faecal immunoglobulin in African equids. Int J Parasitol Parasites Wildl. 2020; 12: 105-112. https://doi.org/10.1016/j.ijppaw.2020.05.005
Ueno H, Gonçalves P. Manual para diagnóstico de los helmintos de Rumiantes. 4 ed: Japan: Japan Internacional Cooperation Agency (JICA); 1998.
Villar D, Schaeffer DJ. Ivermectin use on pastured livestock in Colombia: parasite resistance and impacts on the dung community. Rev Colomb Cienc Pecu. 2022; 36(1): 3-12. https://doi.org/10.17533/udea.rccp.v36n1a2
Wink M. Medicinal plants: a source of anti-parasitic secondary metabolites. Molecules 2012; 17(11): 12771-12791. https://doi.org/10.3390%2Fmolecules171112771
Wood IB, Amaral NK, Bairden K, Duncan JL, Kassai T, Malone JB Jr, Pankavich JA, Reinecke RK, Slocombe O, Taylor SM, Vercruysse J. World Association for the Advancement of Veterinary Parasitology (W.A.A.V.P.) second edition of guidelines for evaluating the efficacy of anthelmintics in ruminants (bovine, ovine, caprine). Vet Parasitol. 1995; 58(3): 181-213. https://doi.org/10.1016/0304-4017(95)00806-2
Worku M, Franco R, Baldwin K. Efficacy of garlic as an anthelmintic in adult Boer goats. Arch Biol Sci. 2009; 61(1): 135-140. http://dx.doi.org/10.2298/ABS0901135W
Zechner G, Bauer C, Jacobs JA, Goossens L, Vertenten G, Taylor MA. Efficacy of diclazuril and toltrazuril in the prevention of coccidiosis in dairy calves under field conditions. Vet Rec 2015; 176(5): 126. https://doi.org/10.1136/vr.102237
Descargas
Publicado
Cómo citar
Número
Sección
Licencia
Derechos de autor 2021 Revista Colombiana de Ciencias Pecuarias
Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-NoComercial-CompartirIgual 4.0.
Los autores permiten a RCCP reimprimir el material publicado en él.
La revista permite que los autores tengan los derechos de autor sin restricciones, y permitirá que los autores conserven los derechos de publicación sin restricciones.
