Antagonismo de Purpureocillium sp. (cepa UdeA0106) con hongos aislados de cultivos de flores

Autores/as

  • Diego A. Salazar-Moncada Universidad de Antioquia
  • Claudia Jaramillo-Mazo Universidad de Antioquia
  • Juliana Vásquez-Restrepo Universidad de Antioquia
  • Camilo Ramírez Universidad de Antioquia
  • Nadya L. Cardona-Bustos Universidad de Antioquia

Palabras clave:

Aislamiento, antagonismo, biocontrol, Purpureocillium ps., sínfilos

Resumen


Estudios desarrollados en el grupo BIOMA de la Universidad de Antioquia, mostraron como el hongo Purpureocillium sp. (cepa UdeA0106) puede biocontrolar una plaga conocida como sínfilos (subfilo Myriapoda: clase Symphyla). Este trabajo buscó identificar géneros de hongos anamórficos, aislados de diferentes sustratos (sínfilos y suelos) para determinar la capacidad antagónica de estos, así como de cepas de una colección de hongos biocontroladores sobre Purpureocillium sp. (cepa UdeA0106). A partir de sínfilos se registraron 9 cepas distribuidas en 3 géneros, y en suelo, 17 cepas correspondientes a 10 géneros. Las pruebas de antagonismo consistieron en una prueba in vitro empleando la técnica de cultivo dual en cajas de Petri con agar sabouraud dextrosa (SDA) utilizando 16 cepas: 12 provenientes de los aislamientos y 4 del cepario del grupo BIOMA. Las variables evaluadas fueron el radio de crecimiento en los enfrentamientos y el porcentaje de inhibición del crecimiento radial (PICR) a los 7  y 14 días. El análisis se realizó con un modelo mixto lineal generalizado mediante Proc GLIMMIX SAS® de manera independiente. El hongo Purpureocillium sp. (cepa UdeA0106) fue inhibido por Volutella sp. (Vo.UdeA0109), Paecilomyces sp. Aislado 2 (Pa.UdeA0109) y Peyronella sp. (Pe.UdeA0108) (p < 0,001), mientras que el resultado no fue estadísticamente significativo con las cepas Beauveria sp. (Be.UdeA0109), Dendrodochium sp. (De.UdeA01109), Myrothecium sp. (Mi.UdeA0109), Paecilomyces sp. Aislado 1 (Pa.UdeA0109), Paecilomyces sp., aislado 3 (Pa.UdeA0209),  Lecanicillium sp. (Le.UdeA0109) y Purpureocillium sp. (Hy.UdeA0109). El análisis muestra que pueden presentarse interacciones entre cepas de hongos con resultados no seados a la hora de realizar actividades de control.

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Biografía del autor/a

Diego A. Salazar-Moncada, Universidad de Antioquia

Instituto de Biología

Claudia Jaramillo-Mazo, Universidad de Antioquia

Instituto de Biología

Juliana Vásquez-Restrepo, Universidad de Antioquia

Instituto de Biología

Camilo Ramírez, Universidad de Antioquia

Docente, Instituto de Biología

Nadya L. Cardona-Bustos, Universidad de Antioquia

Docente, Instituto de Biología

Citas

Acosta J. 2006. Evaluación de hongos entomopatógenos como controladores biológicos de Scutigerella inmaculata [Trabajo de grado]. [Bogotá (Colombia)]: Facultad de Ciencias, Pontificia Universidad Javeriana. p. 79.

Agredo C, Zuluaga J, Chaparro E. 1988 Observaciones sobre características, distribución daños de sínfilos (Symphyla) y otros organismos del suelo, en cultivos de piña (Ananas comosus) Del Valle del Cauca. Acta Agronómica, 38 (2): 65-73.

Agrios G. 2005. Plant Pathology. 5th Ed. California (U. S. A.): Elsevier Academic Press p. 922.

Altinok H. 2002. Antagonistic effect of volatile and non volatile antibiotics produced by fungi isolated form apple phyllosphere on Venturia Inaequalis (Cke.) Want. International Organization for Biological and Integrated Control-west Paleartic Regional Sesion Bulletin, 25 (10): 249, 252.

Arango ME. 2002. Alternativas de manejo para el control biológico de Sigatoka negra (Nycosphaerella fijiensis Morelet) en el cultivo del banano (Musa AAA) En: Memorias XV Reunión Internacional Asociación para la Cooperación en Investigaciones de Bananos en el Caribe y la América Latina (ACORBAT). Medellín (Colombia): Asociación de Bananeros de Colombia (AUGURA). p. 130-134.

Arias E, Piñeros P. 2008. Aislamiento e identificación de hongos filamentosos de muestras de suelo de los páramos de Guasca y Cruz Verde. [Trabajo de grado]. [Bogotá (Colombia)]: Facultad de Ciencias, Pontificia Universidad Javeriana. p. 204.

Aristizábal LF, Vélez JC, León CA. 2006. Diagnóstico del manejo integrado de la broca, Hypothenemus hampei (Ferrari) (Coleoptera: Curculionidae), con caficultores caldenses. Revista Colombiana de Entomología, 32 (2):117-124.

Barneth H. Hunter B. 1998. Illustrated genera of imperfect fungi. 4th ed. St. Paul, Minnesota (U. S. A.): The American Phytopathological Society. p. 218.

Benhamou N, Brodeur J. 2000. Evidence for antibiosis and induced host defense reactions in the interaction between Verticillium lecanii and Penicillium digitatum, the causal agent of green mold. Phytopathology 90 (9): 932-943.

Cardona N, Betancur J. Rivera L, Gaitán A. 2008. Identificación de genes candidatos de patogeniedad en la interacción de la cepa “CENICAFE 9501”, con el nematode del nudo radical Meloidyne spp. Revista Facultad Nacional de Agronomía-Medellín, 61 (2): 4471-4741.

Carlile MJ, Watkinson SC, Gooday GW. 2001. The Fungi. 2da edition. London (U. K.): Elsevier Academic Press. p. 608.

Carmichael J. Kendrick W, Conners I, Singler L. 1980 Gnera of hyphomycetes. Edmonton (Canadá): University of Alberta Press. p. 386.

Chávez N. 2007. Utilización de bacterias y hongos endofiticos para el control biológico del nemátodo barrenados Radapholus similis (Cobb) Thorn. [Tesis de maestría]. [Turrialba (Costa Rica)]: Programa de Educación para el Desarrollo y la Conservación del Centro Agronómico Tropical de Investigación y Enseñanza. p. 85.

Cisternas E, Gerding M, France A, Villagra M. 2002. Evaluación de Beauveria bassiana (Aislación 931) sobre Dalaca Pallens Blanchard (Lepidoptera: Hepialide) en praderas de la X Región. En: XXIV Congreso Nacional de Entomología. Santiago (Chile): Servicio Agrícola y Granadero y Sociedad Chilena de Entomología. p. 43.

Domínguez M. 2009. Phylogeny of the Symphyla (Myriapoda). [Inaugural Dissertation]. [Berlín (Alemania)]: Department of Biology, Chemistry and Pharmacy, Free Universität. p. 142.

Domsche K, Grams W, Anderson TH. 1980. Compendium of soil fungi. Vol. 1 London (U. K.): Academic Press. p. 859.

Ehteshamul-Haque S, Uddin-Ahmad V. 2006. Role of crustacean chitin, fungicides and fungal antagonist on the efficacy of Pseudomonas aeruginosa in protecting chili from root rot. Pakistan Botanical Society. 38 (4): 1323-1331.

Espinal C, Martínez H, Pinzón N, Barrios C. 2005. La cadena del algodón en Colombia, una mirada global de su estructura y dinámica 1991-2005. Bogotá (Colombia): Observatorio de Agrocadenas Colombia. Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural. Documento de Trabajo Nº 53.

Fernández O, Vega L, 2001. Microorganismos antagonistas para el control fitosanitario. Avances en el fomento de productos fitosanitarios no sintéticos. Manejo Integrado de Plagas, 62: 96-100.

Gallego J. Cardona N. 2012. Compatibilidad de la cepa UdeA0106 con bioformulados y productos químicos utilizados en cultivos de flores. [Tesis de Maestría]. [Medellín (Colombia)]: Facultad Ciencias Exactas y Naturales, Universidad de Antioquia. p. 26.

Gerding M, Gerding P, France A. 2002. Evaluación de aislamientos de Matarhizium bouliana (Lepidoptera: Tortricidae). En: XXIV Congreso Nacional de Entomología. Santiago (Chile): Servicio Agrícola y Ganadero y Sociedad Chilena de Entomología. p. 55.

Glober J. 1995. The chemistry of fungal antagonism and defense. Canadian Journal of Botany, 73 (Suppl. 1): 1265-1274.

Gómez E, Álvarez R, Fraga R, Reyes I, Hernández J, Lemes T, San Juan A. Matabolitos producidos por el hongo entomopatógenos Verticilium lecanii. Biotecnología Aplicada, 21 (2): 92-96.

González-Castillo M, Aguilar C, Rodríguez R. 2012. Control de insectos plaga en la agricultura utilizando hongos entomopatógenos: retos y perspectivas. Revista Científica de la Universidad Autónoma de Coahuila, 4 (8): 42-55.

Hafez M, Zaki F, Moursy A, Sabbour M. 1994. Biological effects of the entomb-pathogenic fungus, Beauveria bassiana on the Potato Tuber Moth Pthorimaea operculella (Seller). Journal of Islamic Academy of Sciences, 7 (4): 211-213.

Halliday R. 2004. Confirmation of the presence of Scutigerella immaculate (Newport) in Australia (Symphyla: Scutigerellidae). Australian Journal of Entomology, 43 (1): 43-45.

Henao E, Ospina K. 2008. Insectos benéficos asociados a cultivos de heliconias en el eje cafetero colombiano. Boletín Científico, Centro de Museos, Museo de Historia Natural, 12: 157-166.

Khan A, Williams K, Nevalainen H. 2003. Testing the hematophagous biological control strain Paecilomyces lilacinus 251 for paecilotoxin production. Federation of European Microbiological Societies Microbiologu Letters, 227 (1): 107-111.

Michelbacher AE. 1938 The biology of the garden centipede Scutigerella immaculata. Hilgardia, 11: 55-148.

Mikami Y, Yasawa K, Fukushima K, Arai T, Udagawa S, Samson R. 1989. Paecilotoxin production in a clinical or terrestrial isolares of Paecilomices lilacinus strains. Mycophatologia, 108: 195-199.

Morales J, 2009. Determinación de la patogenicidad in vitro de estructuras tipo II y convidas de la cepa UdeA0106 sobre Scutigerella sp. Y aislamiento de hongos a partir de muestras de sínfilos y suelos en La Ceja (Antioquia). [Trabajo de grado]. [Medellín (Colombia)]: Facultad Ciencias Exactas y Naturales, Universidad de Antioquia. p. 62.

O’Farrill H. 2004. Aplique los plaguicidas correctamente: manual para agricultores. [Internet].Mayagüez (Puerto Rico): Universidad de Puerto Rico. Servicio de extensión agrícola. Disponible en: <http://academic.uprm.edu/ofarrill/htmlobj168/manualagricultores.pdf>.

Paul B. 1999. Supresión of Botrytis cinerea causing the gray mould disease of grape-vine by an aggressive mycoparasite, Phytium radiousum. Federation of European Microbiological Societies Microbiology Letters, 176(1): 25-30.

Pérez Y, Cantillo T, Ramos E, Gonzáles M, López M. 2009 Prospección de hongos del suelo con potencialidades para el control biológico en suelos de agroecosistemas cubanos. Fitosanidad, 13 (1): 3-5.

Pitt J, 2009. Penicillium and related genera. In: Pitt J, Hocking AD, editors, Fungi and food spoilage 3er edition. New York (U. S. A.): Springer. p. 230-338.

Quiroz V, Ferrera R, Alarcón A, Lara M. 2008. Antagonismo in vitro de cepas de Aspergillus y Trochoderma hacia hongos filamentosos que afectan al cultivo del ajo. Revista mexicana de Micología, 26: 27-34.

Safránková I. 2007. Volutella Leaf Blight and Stem Canker on Japanese Pachysandra in the Czech Republic: Plant Protection Science, 43 (1): 10-12.

Salazar-Moncada DA. 2013. Biología y control microbiológico de sínfilos (Myriapoda: Symphyla) en cultivos de flores en Colombia [Tesis de Doctorado]. [Medellín (Colombia)]: Facultad Ciencias Exactas y Naturales, Universidad de Antioquia. p. 167.

Sanz L, Montero M, Grondona I, Llobell A, Monte E, 2002. In vitro antifuga activity of Trichoderma harzianum, T. Longibrachiattum, T. asperellum and T. atroviride against Botrytis cinerea pathogenic to strawberry. International Organization for Biological and Integrated Control-West Paleartic Regional Sesion Bulletin, 25 (10): 253-256.

Sempere F, Santamarina M, 2008. Suppression of Nigrospora orzae (Bereck and Broowe) Petch. by an aggressive mycoparasite and competitor, Penicillium oxalium Curve and Them. International Journal of Food Microbiology, 122: 35-43.

Singh R, Singh B, Upadhyay R, Su Lee Y. 2002. Biological control of Fusarium wilt disease of pogeonpea. The Plant Pathology Journal, 18 (5): 279-283.

Thomsen L, Eilenberg J. 2000. Time-concentration mortality of Pieris brassicae (Lepidoptera: Pieridae) and Agrotis segetum (lepidoptera: Noctuidae) larvae from different destruxins. Envronmental Entomology, 29 (5): 1041-1047.

Trabanino R, Kuniyoshi C, Michel M. 2003. Manuel de agentes de control biológico. [Internet]. Tegucigalpa (Honduras): Centro de control biológico para Centroamérica, Biblioteca Wilson Popenoe-Zamorano. Disponible en: <http://www.zamorano.edu/biblioteca>.

Umble J. Fisher J. 2003a. Sampling considerations for garden symphylans (Order: Cephalostigmata) in western Oregon. Journal of Economic Entomology. 96 (3): 969-974. Fecha de acceso: enero 28, 2014. Disponible en: <http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/12852643>

Umble J. Fisher J. 2003b. Suitability of selected crops and soil for garden symphylan populations (Symphyla, Scutigerellidae: Scutigerella immaculata Newport). Applied Soil Ecology, 24 (2): 152-163.

Villa C. 2006. Estudios in vitro sobre la patogenicidad de cultivos monospóricos de Hyphomycete sp. (Cenicafé 9501) sobre huevos de Meloidogyne spp. provenientes de café. [Trabajo de grado] [Medellín (Colombia)]: Facultad Ciencias Exactas y Naturales, Universidad de

Antioquia. p. 51.

Whipps J. 2001. Microbial interactions and biocontrol in the rizosphere. Journal of Experimental Botany, 52 (1): 487-511.

Worasatit N, Sivasithamparam K, Ghisalberti E, Rowland C, 1994. Variation in prone production, lytic enzymes and control of Rhizoctonia root rot of wheat among single-spore isolates of Trichoderma koningii. Mycological Research, 98: 1357-1363.

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Publicado

2017-10-18

Cómo citar

Salazar-Moncada, D. A., Jaramillo-Mazo, C., Vásquez-Restrepo, J., Ramírez, C., & Cardona-Bustos, N. L. (2017). Antagonismo de &lt;i&gt;Purpureocillium&lt;/i&gt; sp. (cepa UdeA0106) con hongos aislados de cultivos de flores. Actualidades Biológicas, 36(100), 23–31. Recuperado a partir de https://revistas.udea.edu.co/index.php/actbio/article/view/331469

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