Infiriendo el efecto de factores abióticos sobre la temperatura corporal y pérdida de agua sobre modelos de agar de la rana sabanera (Dendropsophus molitor) en Cajicá- Cundinamarca

Autores/as

  • Estefany Acosta L Universidad Militar Nueva Granada
  • Diana Galindo-Uribe Universidad Pontificia Bolivariana https://orcid.org/0000-0002-5721-411X
  • Faidith Bracho-Altamiranda Universidad de Antioquia
  • Nelsy Rocio Pinto-Sánchez Universidad Militar Nueva Granada

DOI:

https://doi.org/10.17533/udea.acbi/v45n118a06

Palabras clave:

anfibios, Colombia, ecologìa termica, punto de rocìo, temperatura de sustrato

Resumen

La alta permeabilidad de la piel representa una restricción fisiológica en anfibios, debido a un mayor riesgo de deshidratación por evapotranspiración en ambientes con menor disponibilidad de agua y mayor temperatura. Dendropsophus molitor es una especie semiacuática con comportamiento de tomar el sol, mecanismo termorregulatorio, necesario para llevar a cabo sus procesos vitales. El objetivo de este trabajo fue evaluar el efecto de las variables ambientales, tipo de microhábitat y color, sobre la temperatura corporal y pérdida de agua en D. molitor. Para esto, se usaron modelos de agar de dos colores, ubicados en dos tipos de microhábitat (húmedo vs. seco), cada uno en dos condiciones de exposición (sol vs. sombra), midiendo el porcentaje de cambio de peso y temperatura corporal. Se realizaron análisis estadísticos como correlación, modelos de efectos lineares mixtos, y el método del factor de inflación de la varianza. Los resultados del estudio mostraron que el punto de rocío, la humedad relativa, la radiación solar, la temperatura del sustrato y el microhábitat, pero no el color de los modelos de agar, tuvieron un efecto significativo sobre el porcentaje de cambio de peso y la temperatura corporal. Ambas variables incrementaron en la condición microhábitat seco y sol, así como en seco y sombra, entre las 12:00 y 16:00 horas. La evapotranspiración está íntimamente relacionada con la radiación y el déficit de presión de vapor, siendo importante para la temperatura corporal del anfibio, debido a que éste se enfría mediante la evapotranspiración del agua a través de su piel.  Por último, se sugiere que las variables a nivel del microhábitat son vitales para estas especies, y deberían ser incorporadas en este tipo de estudios.

|Resumen
= 775 veces | PDF (ENGLISH)
= 98 veces| | PDF
= 515 veces| | HTML (ENGLISH)
= 3 veces| | XML (ENGLISH)
= 3 veces| | RESUMEN GRÁFICO
= 27 veces|

Descargas

Los datos de descargas todavía no están disponibles.

Biografía del autor/a

Estefany Acosta L, Universidad Militar Nueva Granada

Semillero de Evolución y Conservación, Grupo de Ecotoxicología, Evolución, Medio Ambiente Conservación, Programa de Biología Aplicada,Universidad Militar Nueva Granada, Cajicá, Colombia.

Diana Galindo-Uribe, Universidad Pontificia Bolivariana

Facultad de Ciencias, Departamento de Biología, Pontificia Universidad Javeriana, Bogotá, Colombia.

Faidith Bracho-Altamiranda, Universidad de Antioquia

Instituto de Biología, Universidad de Antioquia, Medellín, Colombia.

Nelsy Rocio Pinto-Sánchez, Universidad Militar Nueva Granada

Semillero de Evolución y Conservación, Grupo de Ecotoxicología, Evolución, Medio Ambiente Conservación, Programa de Biología Aplicada,Universidad Militar Nueva Granada, Cajicá, Colombia.

Citas

Alveal-Riquelme, N. F. (2015). Relaciones entre la fisiología térmica y las características bioclimáticas de Rhinella spinulosa (Anura: Bufonidae) en Chile a través del enlace mecanicista de nicho térmico [Tesis de Maestría]. Universidad Concepción, Concepción. Repositorio UDEC. http://repositorio.udec.cl/jspui/handle/11594/1797

Amézquita, A. (1999). Color pattern, elevation and body size in the high andean frog Hyla labialis. Revista de la Academia Colombiana de Ciencias Exactas, Físicas y Naturales, 23, 231–238. https://www.accefyn.com/revista/Vol_23/supl/231-238.pdf

Angarita-Cañón, F.A. (2014). Efecto del ambiente de cultivo y la densidad de siembra sobre la productividad de dos materiales de romero (Rosmarinus officinalis L) israelí y crespo, en Cajicá –Colombia [Tesis de pregrado]. Universidad Militar Nueva Granada, Bogotá. Repositorio UMNG. https://repository.unimilitar.edu.co/handle/10654/13934

Angilletta, M. J., Cooper, B. S., Schuler, M. S., & Boyles, J. G. (2010). The evolution of thermal physiology in endotherms. Frontiers in bioscience, 2, 861–881. https://doi.org/10.2741/e148

Bates, D., Martin, M., Bolker, B., & Walker, S. (2019). Fitting Linear Mixed-Effects Models Using lme4. Statistical software magazine, 67(1), 1–48. https://www.jstatsoft.org/article/view/v067i01

Brattstrom, B. H. (1979). Amphibian temperature regulation studies in the field and laboratory. American Zoologist, 19(1), 345–356. https://doi.org/10.1093/icb/19.1.345

Carey, C. (1978). Factors affecting body temperatures of toads. Oecologia, 35(2), 197–219. https://doi.org/10.1007/BF00344732

Corn, P. S. (2005). Climate change and amphibians. Animal Biodiversity and Conservation, 28, 59–67. https://www.raco.cat/index.php/ABC/article/view/56740/66502

Guarnizo, C. E., Armesto, O., & Acevedo, A. (2014). Dendropsophus labialis. Catálogo de Anfibios y Reptiles de Colombia (pp. 56-61). Medellín, Colombia: Universidad de Antioquia. https://www.researchgate.net/publication/265014754_Dendropsophus_labialis_Catalogo_de_Anfibios_y_Reptiles_de_Colombia

Kaufmann, K., & Dohmen, P. (2016). Adaption of a dermal in vitro method to investigate the uptake of chemicals across amphibian skin. Environmental Sciences Europe, 28(10), 1–13. https://doi.org/10.1186/s12302-016-0080-y

Köhler, A., Sadowska, J., Olszewska, J., Trzeciak, P., Berger, O., & Tracy, C. (2011). Staying warm or moist? Operative temperature and thermal preferences of common frogs (Rana temporaria), and effects on locomotion. The Herpetological Journal, 21, 17–26. http://hdl.handle.net/2263/19493

Korkmaz, S., Goksuluk, D., & Zararsiz, G. (2014). MVN: An R Package for Assessing Multivariate Normality. The R Journal, 6(2), 151–162. https://journal.r-project.org/archive/2014-2/korkmaz-goksuluk-zararsiz.pdf

Leyte-Manrique, A., González-García, R. L. E., Quintero-Díaz, G. E., Alejo-Iturvide, F., & Berriozabal-Islas, C. (2018). Aspectos ecológicos de una comunidad de anuros en un ambiente tropical estacional en Guanajuato, México. Acta zoológica mexicana, 34, 1–14. https://www.redalyc.org/articulo.oa?id=57560238046

Lillywhite, H. B. (2006). Water relations of tetrapod integument. Journal of Experimental Biology, 209(2), 202–226. https://doi.org/10.1242/jeb.02007

Maldonado-Castro, G. A. (2017). Tasas de pérdida de agua por evapotranspiración en dos especies de anfibios ecuatorianos con hábitos ecológicos diferentes: Hypsiboas cinerascens (Anura: Hylidae) y Pristimantis unistrigatus (Anura: Craugastoridae) [Tesis de pregrado]. Pontificia Universidad Católica del Ecuador, Quito. Repositorio PUCE. http://repositorio.puce.edu.ec/handle/22000/13209

Martines, E., & Lira, L. (2008). Cálculo de la Temperatura de Punto de Rocío a Diferentes Valores de Presión. Santiago de Querétaro: Centro Nacional de Metrología. Simposio de Metrología, 22, 1–5. ps://www.cenam.mx/simposio2008/sm_2008/memorias/M1/SM2008-M117-1098.pdf

Méndez-Narváez, J. (2014). Diversidad de anfibios y reptiles en hábitats altoandinos y paramunos de la cuenca del río Fúquene. Biota Colombiana, 15, 94–103. http://revistas.humboldt.org.co/index.php/biota/article/view/310/308

Mitchell, A., & Bergmann, P. J. (2016). Thermal and moisture habitat preferences do not maximize jumping performance in frogs. Functional Ecology, 30, 733–742. tps://doi.org/10.1111/1365-2435.12535

Navas, C. A. (1996a). Implications of microhabitat selection and patterns of activity on the thermal ecology of high elevation neotropical anurans. Oecologia, 108, 617–626. https://doi.org/10.1007/BF00329034

Navas, C. A. (1996b). Metabolic physiology, locomotor performance, and thermal niche breadth in neotropical anurans. Physiological Zoology, 69(6), 1481–1501. http://www.jstor.org/stable/30164271

Navas, C. A. (2006). Patterns of distribution of anurans in high Andean tropical elevations: insights from integrating biogeography and evolutionary physiology. Integrative and comparative Biology, 46(1), 82–91. https://doi.org/10.1093/icb/icj001

Navas, C. A., & Araujo, C. (2000). The Use of Agar Models to Study Amphibian Thermal Ecology. Journal of Herpetology, 34(2), 330–334. https://doi.org/10.2307/1565438

Navas, C. A., Carvajalino-Fernández, J. M., Saboyá-Acosta, L. P., Rueda-solano, L. A., & Carvajalino-Fernández, M. A. (2013). The body temperature of active amphibians along a tropical elevation gradient: patterns of mean and variance and inference from environmental data. Functional Ecology, 27, 1145–1154. https://doi.org/10.1111/1365-2435.12106

Navas, C. A., Gomes, F. R., & Carvalho, J. E. (2008). Thermal relationships and exercise physiology in anuran amphibians: Integration and evolutionary implications. Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Molecular & Integrative Physiology, 151(3), 344–362. https://doi.org/10.1016/j.cbpa.2007.07.003

Oksanen, J., Blanchet, F. G., Kindt, R., Legendre, P., Minchin, P. R., O’hara, R. B., Simpson, G. L., Solymos, P., Stevens, M. H. H., Wagner, H., & Oksanen, M. J. (2013). Package ‘vegan’. Community ecology package, version, 2(9), 1-295. https://cran.r-project.org/web/packages/vegan/vegan.pdf

Percino-Daniel, R., Contreras López, J. M., Téllez-Valdés, O., Méndez de la Cruz, F. R., Gonzalez-Voyer, A., & Piñero, D. (2021). Environmental heterogeneity shapes physiological traits in tropical direct–developing frogs. Ecology and evolution, 11(11), 6688–6702. https://doi.org/10.1002/ece3.7521

R Core Team. (2021). A language and environment for statistical computing. R Foundation for Statistical Computing, Vienna, Austria. URL https://www.R-project.org/

Romero-Barreto, P. G. (2013). Requerimientos fisiológicos y microambientales de dos especies de anfibios (Scinax ruber e Hyloxalus yasuni) del bosque tropical de Yasuní y sus implicaciones ante el cambio climático [Tesis de pregrado]. Pontificia Universidad Católica del Ecuador, Quito. Repositorio PUCE. http://repositorio.puce.edu.ec/handle/22000/5726

Rueda-Solano, L. A., Navas, C., Carvajalino-Fernández, J., & Amézquita, A. (2016). Thermal ecology of montane Atelopus (anura: bufonidae): a study of intrageneric diversity. Journal of Thermal Biology, 58, 91–98. https://doi.org/10.1016/j.jtherbio.2016.04.007

Sanabria, E. A., Quiroga, L. B., & Acosta, J. C. (2003). Relación entre la temperatura corporal de adultos de Bufo arenarum (Anura: Bufonidae) y variables ambientales en un humedal de San Juan, Argentina. Multequina, 12, 49–53 https://www.redalyc.org/articulo.oa?id=42801205

Shoemaker, V. H., & McClanahan, L. L. (1975). Evaporative water loss, nitrogen excretion and osmoregulation in phyllomedusine frogs. Journal of comparative physiology, 100(4), 331–345. https://doi.org/10.1007/BF00691053

Sinervo, B., Jiménez, O., & Luja, V.H. (2012). Protocol for the construction of agar models for amphibian ecophysiology experiments. Santa Cruz. University of California, Santa Cruz.

Spotila, J. R., & Berman, E. N. (1976). Determination of skin resistance and the role of the skin in controlling water loss in amphibians and reptiles. Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Physiology, 55(4), 407–411. https://doi.org/10.1016/0300-9629(76)90069-4

Tattersall, G. J., Eterovick, P. C., & Andrade, D. V. D. (2006). Tribute to R. G. Boutilier: skin colour and body temperature changes in basking Bokermannohyla alvarengai (Bokermann 1956). The Journal of experimental biology, 209, 1185–1196. https://doi.org/10.1242/jeb.02038

Trujillo-Pérez, M. M. (2017, Julio 10). Estación Meteorológica. Aula virtual de la Universidad Militar Nueva Granada. http://virtual2.umng.edu.co/moodle/course/view.php?id=3217

Valdivieso, D. & Tamsitt, J. R. (1974). Thermal Relations of the Neotropical Frog D. labialis (Anura: Hylidae). Royal Ontario Museum, 26, 1–15. https://www.biodiversitylibrary.org/item/123483#page/5/mode/1up

Whitlock, M. C., & Schluter, D. (2015). The analysis of biological data (2ª ed.). Roberts Publishers. https://www.academia.edu/43317940/The_Analysis_of_Biological_Data_Second_Edition

Withers, P. C. (1995). Evaporative water loss and colour change in the Australian desert tree frog Litoria rubella (Amphibia: Hylidae). Records of the Western Australian Museum, 17, 277–281. https://biostor.org/reference/239479

Wygoda, M. L., & Williams, A. A. (1991). Body temperature in free-ranging green tree frogs (Hyla cinerea): A comparison with" typical" frogs. Herpetologica, 47(3), 328–335. http://www.jstor.org/stable/3892625

Zuur, A. F., Ieno, E. N., & Elphick, C. S. (2010). A protocol for data exploration to avoid common statistical problems. Methods in ecology and evolution, 1(1), 3–14. https://doi.org/10.1111/j.2041-210X.2009.00001.x

Zuur, A. F., Ieno, E. N., Walker, N., Saveliev, A. A., & Smith, G. M. (2009). Mixed Effects Models and Extensions in Ecology with R. Journal of Statistical Software, Book Reviews, 32(1), 1–3. https://doi.org/10.18637/jss.v032.b0

Publicado

2022-11-17

Cómo citar

Acosta Lugo, E., Galindo-Uribe, D. M., Bracho-Altamiranda, F., & Pinto-Sánchez, N. R. (2022). Infiriendo el efecto de factores abióticos sobre la temperatura corporal y pérdida de agua sobre modelos de agar de la rana sabanera (Dendropsophus molitor) en Cajicá- Cundinamarca. Actualidades Biológicas, 45(118), 1–16. https://doi.org/10.17533/udea.acbi/v45n118a06

Número

Sección

Artículos completos