Parasites and rickettsia in Creole horses from the flooded savanna of Colombia: risk factors
Parásitos y rickettsias en caballos criollos de la sabana inundable de Colombia: factores de riesgo
DOI:
https://doi.org/10.17533/udea.rccp.e358966Palabras clave:
Arauca, Amblyomma mixtum, Anaplasma spp., garrapatas, Orinoquia, Stomoxys calcitrans, Strongylus equinus, tábano, Trypanosoma evansiResumen
Antecedentes: En la sabana inundable de la Orinoquia colombiana, los caballos de raza Criolla son utilizados para transporte, manejo de ganado o eventos deportivos, lo que los hace valiosos en los sistemas de producción animal y parte de la cultura llanera. Sin embargo, la atención sanitaria es escasa, siendo susceptibles a enfermedades causadas por diferentes patógenos o parásitos. Objetivo: Identificar los diferentes grupos de parásitos que afectan a los caballos de raza criolla y sus cruces en la subregión de la sabana inundable del departamento de Arauca, Colombia. Métodos: Se tomaron muestras coprológicas (i), hematológicas (ii) y de ectoparásitos (iii) de 94 caballos de 24 fincas de tres municipios de esta región. Se aplicó un cuestionario para relacionar los factores de riesgo (sexo, época climática, control y localización) con la presencia o ausencia de parásitos o rickettsias. Para determinar las diferencias estadísticas entre las especies de parásitos se utilizó la prueba t de Student y ANOVA (p ≤ 0,05). Resultados: El 91,5% de los caballos estuvo infectado o infestado con uno o más parásitos, mientras que el 87,5% de las granjas fueron positivas. Se identificaron 24 especies de parásitos y una especie de rickettsia. Strongylus spp., Oxyuris equi, Neobalantidium coli y Blepharocorys valvata se asociaron con el sexo de los caballos. Mientras que Strongylus edentatus, Strongylus equinus, Dictyocaulus arnfieldi, Triodontophorus spp., Cycloposthium compressum, Cycloposthium elongatum, Blepharocorys spp., Amblyomma mixtum y Dermacentor nitens se asociaron con caballos previamente desparasitados. Anaplasma phagocytophilum se asoció con todos los factores de riesgo evaluados en este estudio. Conclusiones: En este estudio se identificaron una variedad de especies de parásitos que podrían representar un riesgo para la salud de esta raza de caballos, dado que se registraron especies que no son comunes en estos animales domésticos. Por otro lado, destaca la presencia de A. phagocytophilum, A. mixtum, Entamoeba spp. y Strongylus spp., especies registradas como zoonóticas, por lo que serían necesarios estudios adicionales para clasificar estas especies.
Descargas
Citas
Acevedo-Gutiérrez L, Paternina L, Londoño A, Parra-Henao G, Rodas J. Potential models of geographic and climatic distribution of the Amblyomma cajennense complex (Acari: Ixodidae), a potential vector of Rickettsia rickettsii in Colombia. Biomédica 2018; 38(4):534-544. https://doi.org/10.7705/biomedica.v38i4.3885
Barros-Battesti D, Arzua M, Bechara G. Carrapatos de Importância Médico-veterinária da Região Neotropical: Um Guia Ilustrado para Identificação de Espécies. Vox/ICTTD-3/Butantan, São Paulo, Brazil, 2006. https://repositorio.butantan.gov.br/handle/butantan/3153
Barros-Battesti D, Castilho V, Dantas-Torres F. Acari (Order): Ticks. In: Gardner S, Gardner S, editors. Concepts in Animal Parasitology. Zea Books, Lincoln, NEBR, USA; 2024. p. 798-835. https://digitalcommons.unl.edu/parasittext/81/
Bedoya M, Arcila V, Díaz D, Reyes E. Prevalencia de parásitos gastrointestinales en équidos del municipio de Oiba (Santander). Revista Spei Domus 2011; 7:12-23. https://revistas.ucc.edu.co/index.php/sp/article/view/604
Bowman D. Parasitology for veterinarians. Edition 8. Elsevier, Madrid; 2004. p.431-1674.
Busi A, Castaño-Villa G, Rivera-Páez F. Ticks (Acari: Ixodidae) on resident and migratory wild birds in Orinoquia region, Colombia. Acta Tropica 2024; 254:107210. https://doi.org/10.1016/j.actatropica.2024.107210
Braga D, Conceição E, Sabillón G, Lopes P, Oliveira P, Santana V. Potentially zoonotic parasites in the soil of public squares in the city of Aracaju (Sergipe, Northeastern Brazil). Vet Parasitol Reg Stud Reports 2021; 26:100619. https://doi.org/10.1016/j.vprsr.2021.100619
Canelón J. Características fenotípicas del caballo criollo. Observaciones en el Estado Apure. Archivos de zootecnia 2005; 54(206-207):217-220. https://www.redalyc.org/pdf/495/49520716.pdf
Cardona J, Álvarez J. Estimación de la edad de los caballos basado en el examen dentario. Revista U.D.C.A Actualidad & Divulgación Científica 2010; 13(1):29-39. http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0123-42262010000100004
Castillo C, Jiménez S, Pérez L, Mira J. Parasitismo gastrointestinal y pulmonar en caballos cocheros del municipio de Caldas, Antioquia, Colombia. 2015. https://repository.unilasallista.edu.co/server/api/core/bitstreams/a4af2c3e-6f99-4d5d-a473-9ea9a6580b69/content
Castillo-Martínez A, Cueto-Medina S, Hernández-Rodríguez M, Salinas-Ramírez N, Romero-Santos R, Martínez-Patricio G, García-López E. Amblyomma mixtum Koch (Acari: Ixodidae) en ambientes peridomésticos de la Región Otomí-Tepehua, Hidalgo, México. Rev Chil Entomol 2020; 46(4):661-669. https://www.biotaxa.org/rce/article/view/66238
Cedrola F, Bordim S, D’Agosto M, Dias R. Intestinal ciliates (Alveolata, Ciliophora) in Brazilian domestic horses (Equus caballus L.) and a review on the ciliate communities associated with horses around the world. Zootaxa 2019; 4585(3):478-488. https://www.researchgate.net/publication/332422985_Intestinal_ciliates_Alveolata_Ciliophora_in_Brazilian_domestic_horses_Equus_caballus_L_and_a_review_on_the_ciliate_communities_associated_with_horses_around_the_world
Chaparro J, Ramírez N, Piedrahita D, Strauch A, Sánchez A, Tobón J, Villar D. Prevalencia de parásitos gastrointestinales en equinos y factores de riesgo asociados en varias zonas de Antioquia, Colombia. CES Med Vet Zootec 2018; 13(1):7-16. https://doi.org/10.21615/cesmvz.13.1.1
Chaparro-Gutiérrez J, Acevedo-Gutiérrez L, Mendell N, Robayo-Sánchez L, Rodríguez-Durán A, Cortés-Vecino J, Fernández D, Ramírez-Hernández A, Bouyer D. First isolation of Rickettsia amblyommatis from Amblyomma mixtum in Colombia. Parasites & Vectors 2023; 16:332. https://doi.org/10.1186/s13071-023-05950-7
Chitimia-Dobler L, Schaper S, Mansfeld P, Gonschorrek J, Broeker M, Nava S. Detection of Amblyomma mixtum (Acari: Ixodidae) in Germany on a human traveler returning from Cuba. J Med Entomol 2020; 57(3):962-964. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31808809/
Daugschies A. Water as a vector for infectious stages of parasites in livestock. Dtsch Tierarztl Wochenschr 2000; 107(8):316-319. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/11036782/
Diall O, Banjyana-Songa E, De Vos-Dbenahman N, Muyldermans S. Detection and strain identification of Trypanosoma evansi by PCR amplification of a kinetoplast minicircle DNA sequence for use in diagnosis and epidemiology of camel trypanosomosis. In: Resistance or Tolerance of Animals to Disease and Veterinary Epidemiology and Diagnostic Methods. Proceedings of EEC Contractants Workshop (Rethymo, Greece); 1992. p. 781.
de Araújo F, Martins T, Ramos C, Nogueira R, Faccini J, Tavares M, de Lima N, de Almeida Júnior E, de Sousa-Paula L, Dantas-Torres F, da Silva Krawczak F, Costa-Junior L, Labruna M, Dall Agnol L, Luz H. Seasonal dynamics of Amblyomma cajennense (Fabricius, 1787) sensu stricto in a degraded area of the Amazon biome, with notes on Rickettsia amblyommatis infection. Parasit Vectors 2023; 16(1):391. https://doi.org/10.1186/s13071-023-05978-9
Dzięgiel B, Adaszek L, Winiarczyk S. Wild animals as reservoirs of Anaplasma phagocytophilum for humans. Epidemiol Rev 2016; 70(3):428-435. https://www.przeglepidemiol.pzh.gov.pl/Wild-animals-as-reservoirs-of-Anaplasma-phagocytophilum-for-humans,180712,0,2.html
Estrada-Peña A. Ticks as vectors: taxonomy, biology and ecology. Rev Sci Tech 2015; 34:53-65. https://doi.org/10.20506/rst.34.1.2345
Feldman R, Guardis M. Diagnóstico coproparasitológico. Fundamentos, normas, metodología, bioseguridad, control de calidad. Nueva guía práctica. Federación Bioquímica de la Provincia de Buenos Aires. 1999. p. 18-22.
Gortazar C, Diez-Delgado I, Barasona J, Vicente J, De La Fuente J, Boadella M. The wild side of disease control at the wildlife-livestock-human interface: A review. Front Vet Sci 2015; 1:27. https://doi.org/10.3389/fvets.2014.00027
Guglielmone A, Nava S, Robbins R. Geographic distribution of the hard ticks (Acari: Ixodida: Ixodidae) of the world by countries and territories. Zootaxa 2023; 5251:1-274. https://doi.org/10.11646/zootaxa.5251.1.1
Gürelli G, Göçmen B. Intestinal ciliate composition found in the feces of the Turk rahvan horse Equus caballus, Linnaeus 1758. Eur J Protistol 2011; 47(4):245-255. https://doi.org/10.1016/j.ejop.2011.04.005
Gürelli G, Lyons E, Kesbiç F. Hindgut ciliate composition of thoroughbred mares in Kentucky, USA, and binary fission in Polymorphella ampulla. Zootaxa 2019; 4646(2):369-384. https://doi.org/10.11646/zootaxa.4646.2.11
Kier K. Biostatistical applications in epidemiology. Pharmacotherapy 2011; 31(1):9-22. https://doi.org/10.1592/phco.31.1.9
Henriksen E, Frainer H, Poulin A, Knudsen R, Amundsen P. Ectoparasites population dynamics are affected by host body size but not host density or water temperature in a 32‐year long time series. Oikos 2023; 3. https://doi.org/10.1111/oik.09328
Hernanz A, Ramírez J, Gerig N. Parasitosis intestinales y extraintestinales en Pediatría. Prot Diagn Terap Pediatr 2023; 2:197-218. https://www.aeped.es/sites/default/files/documentos/13_parasitosis.pdf
Instituto Colombiano Agropecuario, ICA. Conozca los requisitos para movilizar sus equinos en Colombia. Subgerencia de Protección Animal. 2020. https://www.ica.gov.co/noticias/ica-requisitos-para-movilizar-equinos
Instituto Colombiano Agropecuario, ICA. Censos Pecuarios Nacional. Subgerencia de Protección Animal. 2024. https://www.ica.gov.co/areas/pecuaria/servicios/epidemiologia-veterinaria/censos-2016/censo-2018
Ito A, lmai S. Ciliates from the cecum of Capybara (Hydrochoerus hydrochaeris) in Bolivia 2. The Family Cycloposthiidae. Eur J Protistol 2000; 36:69-200. https://www.academia.edu/33310667/Ciliates_from_the_cecum_of_capybara_Hydrochoerus_hydrochaeris_in_Bolivia_2_The_family_cycloposthiidae?uc-g-sw=33310666
Jaimes-Dueñez J, Jiménez-Leaño A, Enrique-Niño S, Arias-Landazábal N, Bedoya-Ríos M, Rangel-Pachón D. Clinical and epidemiological aspects of the infection by Babesia, Theileria and Trypanosoma species in horses from northeastern Colombia. Ticks Tick-borne Dis 2023; 14(6):102208. https://doi.org/10.1016/j.ttbdis.2023.102208
Jiménez L, Mendez S, Dunner S, Cañón J, Cortés O. Colombian Creole horse breeds: Same origin but different diversity. Genet Mol Biol 2012; 35(4): 790-796. https://doi.org/10.1590/S1415-47572012005000064
Jongejan F, Uilenberg G. The global importance of ticks. Parasitology. 2004;129(S1): S3-S14. https://doi.org/10.1017/s0031182004005967
Kleinjan J, Lane R. Larval keys to the genera of Ixodidae (Acari) and species of Ixodes (Latreille) ticks established in California. Pan-Pac Entomol 2008; 84:121-142. https://doi.org/10.3956/2007-38.1
Levine N, Corlis J, Cox F. A newly revised classification of the Protozoa. J Protozool 1980; 27:7-58. https://doi.org/10.1111/j.1550-7408.1980.tb04228.x
Luz H, Costa F, Benatti H, Ramos V, de A Serpa M, Martins T, Acosta I, Ramirez D, Muñoz-Leal S, Ramirez-Hernandez A, Binder L, Carvalho M, Rocha V, Dias T, Simeoni C, Brites-Neto J, Brasil J, Nievas A, Monticelli P, Moro M, Lopes B, Aguiar D, Pacheco R, Souza C, Piovezan U, Juliano R, Ferraz K, Szabó M, Labruna M. Epidemiology of capybara-associated Brazilian spotted fever. PLoS Negl Trop Dis 2019; 13(9):e0007734. https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0007734
Nava S, Beati L, Labruna M, Cáceres A, Mangold A, Guglielmone A. Reassessment of the taxonomic status of Amblyomma cajennense (Fabricius, 1787) with the description of three new species, Amblyomma tonelliae n. sp., Amblyomma interandinum n. sp. and Amblyomma patinoi n. sp., and reinstatement of Amblyomma mixtum Koch, 1844, and Amblyomma sculptum Berlese, 1888 (Ixodida: Ixodidae). Ticks Tick-borne Dis 2014; 5:252-276. https://doi.org/10.1016/j.ttbdis.2013.11.004
Navone G, Gamboa M, Oyhenart M, Orden A. Intestinal parasitosis in Mbyá-Guaraní populations from Misiones Province, Argentina: epidemiological and nutritional aspects. Cadernos de Saúde Pública 2006; 22(5):1089-1100. https://www.scielosp.org/article/csp/2006.v22n5/1089-1100/es/
Novakova M, Literak I, Chevez L, Martins T, Ogrzewalska M, Labruna M. Rickettsial infections in ticks from reptiles, birds and humans in Honduras. Ticks Tick-borne Dis 2015; 6(6):737-742. https://doi.org/10.1016/j.ttbdis.2015.06.009
Mariño-González G, Ramírez-Hernández A, Cortés-Vecino J. Libyostrongylus douglassii (Strongylida: Trichostrongylidae) in ostrich (Struthio camelus) farms from Colombia. Vet Parasitol 2017; 235:53-56. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2017.01.007
Martínez A, Cordero del Campillo M. Capítulo 2. El parasitismo y otras asociaciones biológicas. Parásitos y hospedadores; 2008. p. 12-20. https://www.academia.edu/6162850/El_parasitismo_y_otras_asociaciones_biol%C3%B3gicas_Par%C3%A1sitos_y_hospedadores
Matei I, Estrada-Peña A, Cutler S, Vayssier-Taussat M, Varela-Castro L, Potkonjak A, Zeller H, Mihalca A. A review on the eco-epidemiology and clinical management of human granulocytic anaplasmosis and its agent in Europe. Parasitology & Vectors 2019; 12(1):599. https://doi.org/10.1186/s13071-019-3852-6
Masiga D, Smyth A, Hayes P, Bromidge T, Gibson W. Sensitive detection of trypanosomes in Tse tse flies by DNA amplification. Int J Parasitol 1992; 22:9-18. https://doi.org/10.1016/0020-7519(92)90047-o
Mehlhorn H. Animal parasites: diagnosis, treatment, prevention. Springer; 2016. p. 251-484. https://vetbooks.ir/animal-parasites-diagnosis-treatment-prevention/
Moreno Y, Salamanca A, Quintero A, Arenas M. Agentes parasitarios presentes en el tracto gastrointestinal de caballos criollos de la sabana inundable del municipio de Arauca, Colombia. AICA 2015; 6:150-155. https://repository.ucc.edu.co/server/api/core/bitstreams/5da0ced3-3abc-4fd6-a043-213dbfb50137/content
Luckins A. Trypanosoma evansi in Asia. Parasitol Today 1988; 4:137-142. https://doi.org/10.1016/0169-4758(88)90188-3
Otranto D, Strube C, Xiao L. Zoonotic parasites: the One Health challenge. Parasitol Res 2021; 120:4073-4074. https://doi.org/10.1007/s00436-021-07221-9
Ossa-López P, Ramírez-Chaves H, Álvarez M, Castaño G, Rivera-Páez F. Bacterial community of ticks (Acari: Ixodidae) and mammals from Arauca, Colombian Orinoquia. Int J Parasitol: Parasites Wildl 2024; 24:100943. https://doi.org/10.1016/j.ijppaw.2024.100943
Rangel-Ch J, Gopar-Merino L, Minorta-Cely V. Climatic characterization of the flooded savannahs and wetlands of Arauca, Colombia. BioLlania 2017; 15:357-409. https://www.researchgate.net/publication/339149772_Caracterizacion_climatica_de_las_sabanas_inundables_y_los_humedales_de_Arauca_Colombia
Ramírez-Hernández A, Polo G, Robayo-Sánchez L, Cruz-Maldonado O, Imbacuán-Pantoja W, Cortés-Vecino J.A. Gastrointestinal and pulmonary parasites of working horses from Colombia. Vet Parasitol Reg Stud Rep 2019; 17:100296. https://doi.org/10.1016/j.vprsr.2019.100296
Rivera-Páez F, Labruna M, Martins T, Perez J, Castaño-Villa G, Ossa-López P, Gil C, Rodrigues B, Aricapa-Giraldo H, Camargo-Mathias M. Contributions to the knowledge of hard ticks (Acari: Ixodidae) in Colombia. Ticks Tick-borne Dis 2018; 9(1):57-66. https://doi.org/10.1016/j.ttbdis.2017.10.008
Rodríguez-Durán A, Blanco L, Peña R. Principales protozoarios gastrointestinales en chigüiros silvestres (Hydrochoerus hydrochaeris) en una vereda del municipio de Arauca, Colombia. Zootecnia Trop 2015; 33(3):261-268. https://hdl.handle.net/20.500.12494/1008
Rodríguez-Durán A, Muñoz-Duque J, López-Osorio S, Chaparro-Gutiérrez J, Cortés-Vecino J. A. Trypanosoma evansi in horses from Colombia-Associated infection factors. Acta Sci Vet 2023; 51(Suppl 1):896. https://pesquisa.bvsalud.org/portal/resource/pt/biblio-1444653
Rodríguez-Durán A, Chaparro-Gutiérrez J, Cortés-Vecino J. Factors associated with tick infestation in cattle in the department of Arauca, Colombia. Rev Colomb Cienc Pecu 2024; 37(Suppl):150-151. https://revistas.udea.edu.co/index.php/rccp/issue/view/4326
Rodríguez-Durán A, Robayo-Sánchez L, Bentez-Molano J, Chaparro-Gutiérrez J, Cortés-Vecino J. Wildlife as important hosts of ticks in the flooded savanna of Colombia. Braz J Vet Res Anim Sci 2025; 62:e226567. https://www.revistas.usp.br/bjvras/issue/archive
Rodríguez-Qüenza L, Correa-Toro A, Hernández-Rodríguez M, Salamanca A. Ethnography of the Araucanian producer of the flooded savannah, Colombia. Rev Acad Colomb Cienc Ex Act 2019; 43(166):10-16. https://doi.org/10.18257/raccefyn.725
Salamanca A, Monroy N, Parés-Casanova P, Crosby R. Aporte a la evaluación para la preservación del caballo Criollo Araucano en Colombia. Zootecnia Tropical 2015; 33(4):317-325. https://repository.ucc.edu.co/entities/publication/4c76b637-9f3f-4b02-b8b1-fca9a5af75de
Salamanca A, Arteaga R, Alfonso B, Quintero A. Identificación de nematodos en mulares que habitan la sabana inundable de Arauca, Colombia. AICA 2017; 10:110-116. https://www.cabidigitallibrary.org/doi/pdf/10.5555/20183221730
Salamanca C, Parés-Casanova P, Crosby R, Monroy N. Biometric analysis of araucano criollo horse. Arch Zootec 2017; 66:267-278. https://www.researchgate.net/publication/311922132_Analisis_biometrico_del_caballo_Criollo_Araucano
Salamanca-Carreño A, Tamasaukas R, Cesar-Giraldo F, Darío Quintero A, Hernández-Rodríguez M. Interacción entre factores ambientales y raciales sobre la prevalencia de hemotrópicos en hembras bovinas doble propósito en sabanas inundables araucanas, Colombia. Revista Científica 2018; 28(1):52-62. https://www.redalyc.org/journal/959/95955168007/
Salamanca-Carreño A, Parés-Casanova P, Bonilla A, Martínez G, Vélez-Terranova M. El agregado racial equino en Colombia: ¿Sería el caballo Criollo Llanero Araucano el que indica mejor los ancestros?. Revista de Investigaciones Veterinarias del Perú 2024; 35(5):e27552. https://doi.org/10.15381/rivep.v35i5.27552
Sih A, Spiegel O, Godfrey S, Leu S, Bull M. Integrating social networks, animal personalities, movement ecology and parasites: a framework with examples from a lizard. Anim Behav 2018; 136:195-205. https://doi.org/10.1016/j.anbehav.2017.09.008
Stringer A. Infectious diseases of working equids. Vet Clin North Am Equine Pract 2014; 30:695-718. https://doi.org/10.1016/j.cveq.2014.09.001
Strickland R, Gerrish R, Hourrigan J, Schubert G. Ticks of veterinary importance. USDA Agricultural Handbook 485. Washington; 1976. https://www.govinfo.gov/content/pkg/GOVPUB-A-PURL-gpo27523/pdf/GOVPUB-A-PURL-gpo27523.pdf
Thienpont D, Rochette F, Vanparijs O. Diagnosing helminthiasis by coprological examination. 2nd ed. Beerse, Belgium: Janssen Research Foundation; 1986. https://www.researchgate.net/publication/283924775_Diagnosing_Helminthiasis_Through_Coprological_Examination
Vélez A. La coprología y otras técnicas de diagnóstico. In: Guías en Parasitología Veterinaria. Bogotá, Colombia: Exitodinámica; 2006. p. 28-45. https://catalogo.unillanos.edu.co/cgi-bin/koha/opac-detail.pl?biblionumber=6242
Villar D, Gutiérrez J, Piedrahita D, Rodríguez-Durán A, Cortés-Vecino JA, Góngora-Orjuela A, Martínez N, Chaparro-Gutiérrez J. In vitro resistance to topical acaricides of the cattle tick Rhipicephalus (Boophilus) microplus from four regions of Colombia. CES Med Vet Zoot 2016; 11(3):58-70. http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1900-96072016000300007
Villar D, Klafke G, Rodríguez-Durán A, Bossio F, Miller R, Pérez de León A, Cortés-Vecino J, Chaparro-Gutiérrez J. Resistance profile and molecular characterization of pyrethroid resistance in a Rhipicephalus microplus strain from Colombia. Med Vet Entomol 2020; 34(1):105-115. https://doi.org/10.1111/mve.12418
Uribe M, Hermosilla C, Rodríguez-Durán A, Vélez J, López-Osorio S, Chaparro-Gutiérrez J, Cortés-Vecino J.A. Parasites circulating in wild synanthropic capybaras (Hydrochoerus hydrochaeris): A One Health Approach. Pathogens 2021; 10:1152. https://doi.org/10.3390/pathogens10091152
Descargas
Publicado
Cómo citar
Número
Sección
Licencia
Derechos de autor 2021 Revista Colombiana de Ciencias Pecuarias

Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-NoComercial-CompartirIgual 4.0.
Los autores permiten a RCCP reimprimir el material publicado en él.
La revista permite que los autores tengan los derechos de autor sin restricciones, y permitirá que los autores conserven los derechos de publicación sin restricciones.