Farelo de girassol com e sem suplementação de fitase em dietas para juvenis de jundiá (Rhamdia quelen)
DOI:
https://doi.org/10.17533/udea.rccp.v32n4a04Palavras-chave:
aquicultura, enzima, desempenho produtivo, farelo de girassol, fitase, ingrediente alternativo, jundiá, nutrição dos peixes, piscicultura, Rhamdia quelenResumo
Antecedentes: Os custos relativos a alimentação na piscicultura pode ultrapassar 70% do custo final, neste sentido, as indústrias de rações têm procurado formular dietas balanceadas com subprodutos de menor valor de mercado para minimizar estes custos. Objetivo: Esse estudo objetivou avaliar o farelo de girassol como sucedâneo parcial (0, 10 e 20%) do farelo de soja, suplementado ou não com a fitase (1.500 FTU/kg), em dietas isoprotéicas (27% de PB) e isoenergéticas (3400 kcal/ED/kg de ração) para o jundiá (Rhamdia quelen). Métodos: Os peixes, 360 juvenis (15,77 ± 0,56 g) foram distribuídos aleatoriamente em 24 unidades experimentais, num delineamento inteiramente casualizado, em esquema fatorial (3x2) e 4 repetições. Após 90 dias foram avaliados: desempenho produtivo, variáveis hematológicas, histologia de tecido intestinal, composição bromatológica da carcaça e de matéria mineral dos ossos. Resultados: O emprego de 20% de farelo de girassol melhorou o ganho de peso dos peixes e a taxa de eficiência protéica da ração, sem diferença nas outras avaliações, ou para a interação entre os demais fatores avaliados. Conclusão: Pode-se concluir que o farelo de girassol pode ser utilizado em 20% da ração do jundiá, como sucedâneo ao farelo de soja e, que a inclusão de fitase (1,500 FTU/kg) não melhorou o valor nutritivo destas rações.
Downloads
Referências
Association of Official Analytical Chemists - AOAC. Official methods of analysis of association of official analytical chemists. 18thed. Gaithersburg, Maryland; 2000.
Bergamin GT, Veiverberg CA, Silva LP, Alexandra-Pretto A, Siqueira LV, Radünz-Neto J. Extração de antinutrientes e aumento da qualidade nutricional dos farelos de girassol, canola e soja para alimentação de peixes. Cienc Rural 2013; 43:1878-1884. http://dx.doi.org/10.1590/S0103-84782013001000024
Biswas A, Araki H, Nakamori T, Kato K, Takii K. Fish meal replacement by soy protein from soymilk in the diets of red sea bream (Pagrus major). Aquac Nutr 2017; 23:1379-1389. https://doi.org/10.1111/anu.12513
Borges A, Scotti LV, Siqueira D R, Jurinitz DF, Wassermann GF. Hematologic and serum biochemical values for jundiá (Rhamdia quelen). Fish Physiol Biochem 2004; 30:21-25. http://dx.doi.org/10.1007/s10695-004-5000-1
Carvalho CS, Fernades MN. Effect of temperature on copper toxicity and hematological responses in the neotropical fish Prochilodus scrofa at low and high pH.Aquaculture 2006; 251:109-117. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2005.05.018
Costa OFT, Ferreira DJS, Mendonça FLP, Fernandes MN. Susceptibility of the Amazonian fish, Colossoma macrapomum (Serrasalminae) to short-term exposure to nitrite. Aquaculture2004;232:627-636. https://doi.org/10.1016/S0044-8486(03)00524-6
FAO, 2012. FAO Statistical Yearbook 2013-World Food and Agriculture. FAO. http://www.fao.org/3/i3107e/i3107e00.htm
Fortes-Silva R, Sánchez-Vázquez FJ, Martínez FJ. Effects of pretreating a plant-based diet with phytase on diet selection and nutrient utilization in European sea bass. Aquaculture, 2011; 319:417-422. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2011.07.023
Freitas JMA, Sary C, Luchesi JD, Feiden A, Boscolo WR. Proteína e energia na dieta de jundiás criados em tanques-rede. Rev Bras Zootec 2011; 40:2628–2633. http://dx.doi.org/10.1590/S1516-35982011001200002
Furuya WM, Gonçalves GS, Furuya VRB, Hayashi C. Fitase na alimentação da tilápia-do-Nilo (Oreochromis niloticus). Desempenho e digestibilidade. Rev BrasZootec 2001; 30(3):924-929. http://dx.doi.org/10.1590/S1516-35982001000400003
Gomes LC, Golombieski I, Gomes ARC, Baldisserotto B. Biologia do jundiá Rhamdia quelen (Teleostei, Pimelodidae). Cienc Rural 2000; 30 (1):179-185. http://dx.doi.org/10.1590/S0103-84782000000100029
Gonçalves GS, Pezzato LE, Barros MM, Kleeman GK, Rocha DF. Efeitos da Suplementação de Fitase sobre a Disponibilidade Aparente de Mg, Ca, Zn, Cu, Mn e Fe em Alimentos Vegetais para a Tilápia-do-Nilo. Rev BrasZootec 2004; 34 (6):2155-2163. http://dx.doi.org/10.1590/S1516-35982005000700001
González-Pérez S, Vereijken JM, Sunflower proteins: overview of their physicochemical, structural and functional properties. J Sci Food Agric 2007; 87 (12):2173-2191. https://doi.org/10.1002/jsfa.2971
Hussain SM, Afzal M, Javid A, Hussain AI, Ali Q, Mustafa I. Efficacy of phytase supplementation on growth performance and mineral digestibility of Labeo rohita fingerlings fed on cottonseed meal based diet. Pak J Zool 2015; 47(3):699-705. https://pdfs.semanticscholar.org/ab57/ca65ab03713057973535f0a4708365500a46.pdf
Kim K, Park Y, Je H, Seong M, Damusaru JH, Kim S, Jung J, Bai S. Tuna byproducts as a fish-meal in tilapia aquaculture.Ecotoxicol Environ Saf 2019; 172:364-372.https://doi.org/10.1016/j.ecoenv.2019.01.107
Lin S, Mai K, Tan B, Liu W. Effects of four vegetable protein supplementation on growth, digestive enzyme activities and Liver functions of juvenile tilapia (Oreochromis niloticus × Oreochromis aureus). J World Aquac Soc 2010; 41:583-593.https://doi.org/10.1111/j.1749-7345.2010.00398.x
Lira, AD. Digestibilidade aparente de nutrientes e energia do farelo de girassol para juvenis de tilápia do Nilo. Dissertação (Dissertação em Zootecnita) – UFBA. Salvador. 2014. [Accessed April 2018]. URL: http://doczz.com.br/doc/241661/farelo-de-girassol-na-alimenta%C3%A7%C3%A3o-de-til%C3%A1pia-do-nilo
Lovatto NL, Silva LP, Loureiro BB, Goulart FR, Pretto A, Speroni CS, Radunz-Neto J, Loro VL. Efeitos de dietas contendo concentrados proteicos vegetais no desempenho e atividade de enzimas digestivas de jundiá (Rhamdia quelen). Semin Cienc Agrar 2014; 35:1071–1081. https://doi.org/10.5433/1679-0359.2014v35n2p1071
Meyer G, Fracalossi, DM. Protein requirement of jundia fingerlings, Rhamdia quelen, at two dietary energy concentrations. Aquaculture 2004; 240:331-343. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2004.01.034
Munguti J, Charo-Karisa H, Opiyo MA, Ogello EO, Marijani E, Nzayisenga L, Liti D. Nutritive value and availability of commonly used feed ingredients for farmed Nile tilapia (Oreochromis niloticus L.) and African catfish (Clarias gariepinus, Burchell) in Kenya, Rwanda and Tanzania. Afr J Food Agric Nutr Dev 2012; 12:6135-6155. https://www.ajol.info/index.php/ajfand/article/view/77095/67557
Olvera-Novoa MA, Oliveira-Castillo L, Martínez-Palacios CA. Sunflower seedmeal as a protein source in diets for Tilapia rendalli(Boulanger, 1896) fingerlings.Aquac Res 2002; 33 (3):223-229. https://doi.org/10.1046/j.1365-2109.2002.00666.x
Pezzato LE, Barros MM, Furuya WM. Valor nutritivo dos alimentos utilizados na formulação de rações para peixes tropicais. R Bras Zootec 2009; 38:43-51. http://dx.doi.org/10.1590/S1516-35982009001300005
Pontes TC, Cagol L, Dutra FM, Portz L. Disponibilidade do fósforo em alimentos de origem vegetal: atuação na nutrição de peixes. Arq Ciênc Vet Zool 2015; 18 (3):199-205. http://revistas.unipar.br/index.php/veterinaria/article/viewFile/5542/3135
Rahmdel KJ, Noveirian HA, Falahatkar B, Lashkan AB. Effects of replacing fish meal with sunflower meal on growth performance, body composition, hematological and biochemical indices of common carp (Cyprinus carpio) fingerlings. Fish & Aquat Life 2018; 126:121-129. https://doi.org/10.2478/aopf-2018-0013
Ranzani-Paiva MJT, Pádua SB, Tavares-Dias M, Egami, MI. Técnicas de análise hematológica em peixes. Maringá, Eduem; 2013.
Rocha CB, Pouey JLOF, Lopes PRS, Enke DBS, Xavier EG. Suplementação da enzima fitase e o desempenho e retenção mineral em juvenis de jundiá (Rhamdia quelen). Bol Inst Pesca 2008; 34 (1):151 – 157. https://www.pesca.sp.gov.br/boletim/index.php/bip/article/view/780/763
Rodrigues APO, Gominho-Rosa, MDC, Cargnin-Ferreira E, De Francisco A, Fracalossi DM. Different utilization of plant sources by the omnivores jundiá catfish (Rhamdia quelen) and Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Aquac Nut 2012; 18:65-72. https://doi.org/10.1111/j.1365-2095.2011.00877.x
Sanchez MSS, Nascimento MS, Hisano H. Replacement of corn by sorghum in diets for pacu juvenile. Pesqui Agropecu Bras 2016; 51 (1):1-8. http://dx.doi.org/10.1590/S0100-204X2016000100001
Shchekoldina T, Aider M. Production of low chlorogenic and caffeic acid containing sunflower meal protein isolate and its use in functional wheat bread making. J Food Sci Technol 2014; 51:2331–2343. https://doi.org/10.1007/s13197-012-0780-2
Smith AA, Dumas A, Yossa R, Overturf KE, Bureau DP. Effects of soybean and sunflower meals on the growth, feed utilization, and gene expression in two Canadian strains of juvenile Arctic charr (Salvelinus alpinus). Aquaculture 2017; 481:191–201. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2017.08.038
Smith AA, Dumas A, Yossa R, Overturf KE, Bureau DP. Effects of soybean meal and high-protein sunflower meal on growth performance, feed utilization, gut health and gene expression in Arctic charr (Salvelinus alpinus) at the grow-out stage. Aquac Nutr 2018; 24:1540– 1552. https://doi.org/10.1111/anu.12691
Tavares-Dias M, Melo JFB, Moraes G, Moraes FR. Características hematológicas de teleósteos brasileiros. IV. Variáveis do Jundiá (Rhamdia quelen) (Pimelodidae). Cienc Rural 2002; 32 (4):693-698. http://dx.doi.org/10.1590/S0103-84782002000400024
Tavares-Dias M, Moraes FR. Hematologia de peixes teleósteos. Ribeirão Preto: Villimpress; 2004.
Tavares-Dias M, Schalch SHC, Martins ML, Onaka EM, Moraes FR. Hematological characteristics of Brazilian teleostes. III. Parameters of the hybrid tambacu (Piaractus mesopotamicus, Holmberg, 1887 x Colossoma macropomum Cuvier, 1818) (Osteichthyes: Characidae). Rev Bras Zool 2000; 17 (4):899-926. http://dx.doi.org/10.1590/S0101-81752000000400002
Tavares-Dias M, Sandrim EFS, Moraes FR, Carneiro PCF. Physiological responses of “Tambaqui” Colossoma macropomum(Characidae) to a cute stress. Bol Inst Pesca 2001; 27 (1):43-48. https://www.pesca.sp.gov.br/boletim/index.php/bip/article/view/689
Vohra A, Satyanarayana T. Purification and characterisation of a thermostable and acid-stable phytase from Pichia anomala. World J Microbiol Biotechnol 2002; 18:687–691. https://doi.org/10.1023/A:1016850121719
Downloads
Publicado
Como Citar
Edição
Seção
Licença
Copyright (c) 2019 Revista Colombiana de Ciencias Pecuarias
Este trabalho está licenciado sob uma licença Creative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International License.
Os autores autorizam a RCCP a reimprimir o material nela publicado.
A revista permite que o(s) autor(es) detenham os direitos autorais sem restrições, e permitirá que o(s) autor(es) mantenham os direitos de publicação sem restrições.