Influência de diferentes suplementações proteicas sobre arecuperação e maturação in vitro de oócitos bovinos
DOI:
https://doi.org/10.17533/udea.rccp.v33n3a01Palavras-chave:
albumina sérica bovina, azul cresil brilhante, competência meiótica, maturação oocitária, produção in vitro de embriões, qualidade do oócito, recuperação do oocitária, soro fetal bovinoResumo
Antecedentes: A qualidade e a maturação de oócitos são influenciadas pela suplementação proteica. Objetivo: Avaliar a influência de concentrações de soro fetal bovino (FBS) e albumina sérica bovina (BSA) sobre a recuperação e maturação in vitro (IVM) de oócitos bovinos. Métodos: O estudo foi dividido em Etapa 1 (recuperação de oócitos) e Etapa 2 (IVM). Na primeira etapa, três experimentos foram realizados de acordo com o meio de recuperação: (R1) 10 vs. 20% FBS; (R2) 5 vs. 10% BSA; e (R3) melhores resultados de R1, R2 e a combinação de FBS+BSA (5+5%). Na segunda etapa, o meio de maturação foi suplementado de acordo com três experimentos: (M1) 5 vs. 10% FBS; (M2) 0,4 vs. 0,8% BSA; e (M3) melhores resultados de M1, M2 e a combinação de FBS+BSA (5+0,8%). Resultados: Na Etapa 1 (R1 e R2), os meios com 10% FBS e 10% BSA mostraram melhores resultados de qualidade oocitária e foram definidos para o experimento R3. Em R3, 10% FBS e a combinação de FBS+BSA (5+5%) permitiram a recuperação de oócitos de melhor qualidade. Na segunda etapa (M1 e M2), meios com ambos os níveis de FBS (5 e 10%) e 0,8% BSA foram definidos como os melhores de acordo com as taxas de maturação e viabilidade de células do cumulus, então foram definidos para o experimento M3. No M3, não houve diferença entre os suplementos. Conclusões: Para a recuperação oocitária, 10% FBS e a combinação de FBS+BSA (5+5%) podem ser usados para obter oócitos imaturos. Para maturação in vitro, FBS (ambos os níveis, 5 e 10%) e BSA (0,8%) podem ser usados sozinhos ou em combinação.
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Referências
Ali A, Sirard MA. Effect of the absence or presence of various protein supplements on further development of bovine oocytes during in vitromaturation. Biol Reprod 2002; 66(4):901-905.DOI: https://doi.org/10.1095/biolreprod66.4.901
Ambrogi M, Dall'Acqua PC, Rocha-Frigoni NAS, Leão BCS, Mingoti GZ. Transporting bovine oocytes in a medium supplemented with different macromolecules and antioxidants: Effects on nuclear and cytoplasmic maturation and embryonic development in vitro. Reprod Domest Anim 2017; 52(3):409-421.DOI: https://doi.org/10.1111/rda.12923
Araújo MS, Midyan DG, Volpato R, Landim FC. Principais mecanismos envolvidos na maturação oocitária em bovinos: da oogenese a maturação in vitro. Encic Biosf 2014; 10:2373-2388.DOI: http://hdl.handle.net/11449/137126
Ashry M, Lee K, Mondal M, Data TK, Folger JK, Rajput SK, Zhang K, Hemeida NA, Smith GW. Expression of TGFβ superfamily components and other markers of oocyte quality in oocytes selected by brilliant cresyl blue staining: relevance to early embryonic development. Mol Reprod Dev 2015; 82(3):251-264. DOI: https://doi.org/10.1002/mrd.22468
Boruszewska D, Sinderewicz E, Kowalczyk-Zieba J, Grycmacher K. Studies on lysophosphatidic acid action during in vitropreimplantation embryo development. Domest Anim Endocrinol 2016; 54:15-29. DOI:https://doi.org/10.1016/j.domaniend.2015.08.003
Carrocera S, Caamaño JN, Trigal B, Martín D, Díez C. Developmental kinetics of in vitro–produced bovine embryos: an aid for making decisions. Theriogenology 2016; 85(5):822-827. DOI: https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2015.10.028
Chasombat J, Nagai T, Parnpai R, Vongpralub T. Pretreatment of in vitro matured bovine oocytes with docetaxel before vitrification: effects on cytoskeleton integrity and developmental ability after warming. Cryobiology 2015; 71(2):216-223. DOI: https://doi.org/10.1016/j.cryobiol.2015.07.002
Chen H, Zhang L, Zou P, Wang Y. Effects of oocyte vitrification on epigenetic status in early bovine embryos. Theriogenology 2016; 86(3):868-878. DOI: https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2016.03.008
Crocomo LF, Marques Filho WC, Landim-Alvarenga FC, Bicudo SD. Aspectos bioquímicos e ultraestruturais da maturação oocitária. Vet Zoot 2011; 18:542-552.DOI: http://hdl.handle.net/11449/141245
Del Collado M, Saraiva NZ, Lopes FL, Cruz MH, Gaspar RC, Oliveira CS, Perecin F, Garcia JM. Efeitos da redução ou substituição do soro fetal bovino por outros compostos na maturação in vitro de oócitos bovinos. Pesqui Vet Bras 2014; 34(7):689-694. DOI: http://dx.doi.org/10.1590/S0100-736X2014000700014
Del Collado M, Saraiva NZ, Lopes FL, Gaspar RG, Padilha LC, Costa RR, Rossi GF, Vantini R, Garcia JM. Influence of bovine serum albumin and fetal bovine serum supplementation during in vitro maturation on lipid and mitochondrial behaviour in oocytes and lipid accumulation in bovine embryos. Reprod Fertil Dev 2015; 28:1-12. DOI: https://doi.org/10.1071/RD15067
Dinopoulou V, Drakakis P, Kefala S, Kiapekou E, Bletsa R, Anagnostou E, Kallianidis K, Loutradis D. Effect of recombinant-LH and hCG in the absence of FSH on in vitro maturation (IVM) fertilization and early embryonic development of mouse germinal vesicle (GV)-stage oocytes. Reprod Biol 2016; 16(2):138-146. DOI:https://doi.org/10.1016/j.repbio.2016.01.004
Galeati G, Vallorani C, Bucci D, Bernadini C, Tamanini C, Parmeggiani A, Spinaci M. Daidzein does affect progesterone secretion by pig cumulus cells but it does not impair oocytes IVM. Theriogenology 2010; 74(3):451-457. DOI: https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2010.02.028
Gonçalves PB, Barreta MH, Sandri LR, Ferreira R, Antoniazzi AQ. In vitro production of bovine embryos: the state of the art. Rev Bras Reprod Anim 2007; 31:212-217. DOI: https://doi.org/10.1079/PAVSNNR201510048
Leivas FG, Brum DS, Fialho SS, Saliba WP, Alvim MTT, Bernardi ML, Rubin MIB, Silva CAM. Fetal calf serum enhances in vitroproduction of Bos taurus indicus embryos. Theriogenology 2011; 75(3):429-433. DOI:https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2010.08.017
Maia RC, Mogolllón EM, Dubeibe DF, Pena B, Dias AJB. Effect of seasonality on the quality of bovine oocytes selected by brilliant cresyl blue method. Rev Colomb Cienc Pecu 2017; 30:259-266.DOI: https://doi.org/10.17533/udea.rccp.v30n4a01
Muñoz AI, Mischler S. Electrochemical quartz crystal microbalance and X-Ray Photoelectron spectroscopy study of cathodic reactions in bovine serum albumin containing solutions on a physical vapour deposition-CoCrMo biomedical alloy. Electrochim Acta 2015; 180:96-103. DOI: https://doi.org/10.1016/j.electacta.2015.08.017
Pereira MM, Costa FQ, Oliveira AP, Serapião RV, Machado MA, Viana JHM, Camargo LSA. Quantificação de transcritos maternos em oócitos bovinos submetidos a diferentes condições de maturação. Arq Bras Med Vet Zootec 2010; 62(6):1394-1400. DOI:http://dx.doi.org/10.1590/S0102-09352010000600015
Santos MVO, Borges AA, Queiroz Neta LB, Pereira AF. Influence of the recovery method on the quanti-qualitative parameters of bovine oocytes. ARS Vet 2016; 32:105-109. DOI: https://doi.org/2175-0106
Santos MVO, Queiroz Neta LB, Borges AA, Pereira AF. Influence of commercially available follicle stimulating hormone on the in vitromaturation of bovine oocytes. Semin Cienc Agrar 2017; 38(3):1393-1402. DOI: http://dx.doi.org/10.5433/1679-0359.2017v38n3p1393
Sugimura S, Yamanouchi T, Palmerini MG, Hashiyada Y, Imai K, Gilchrist RB. Effect of pre-in vitro maturation with cAMP modulators on the acquisition of oocyte developmental competence in cattle. J Reprod Dev 2018; 64(3):233-241. DOI: https://doi.org/10.1262/jrd.2018-009
Ulloa SMB, Heinzmann J, Herrmann D, Timmermann B, Baulain U, Grobfeld R, Diederich M, Lucas-Hahn A, Niemann H. Effects of different oocyte retrieval and in vitro maturation systemson bovine embryo development and quality. Zygote 2014; 23(3):367-377. DOI: https://doi.org/10.1017/S0967199413000658
Van Der Valk J, Brunner D, Desmet K, Fex svenningsen A, Honegger P, Knudsen LE, Lindl T, Noraberg J, Price A, Scarino ML, Gstraunthaler G. Optimization of chemically defined cell culture media-replacing fetal bovine serum in mammalian in vitro methods. Toxicol In Vitro 2010; 24(4):1053-1063. DOI: https://doi.org/10.1016/j.tiv.2010.03.016
Varago FC, Mendonça LF, Lagares MA. Bovine in vitro embryo production: state of art and perspective of a constant evolution technique. Rev Bras Reprod Anim 2008; 32:100-109. DOI: https://doi.org/10.1079/201510048
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