Micropropagación clonal de tres genotipos mortiño, Vaccinium meridionale SW., por proliferación de yemas axilares

  • Dagoberto Castro-Restrepo Universidad Católica de Oriente
  • Jairo A. Álvarez-Guzmán Universidad Católica de Oriente
Palabras clave: aclimatización, brotes axilares, enraizamiento ex vitro, Vaccinium

Resumen

El mortiño (Vaccinium meridionale Sw.) es una especie frutal de interés por su contenido de polifenoles. Para el fomento del cultivo se requiere una efectiva propagación masiva. Esta investigación tuvo por objetivo desarrollar un sistema de micropropagación de tres genotipos silvestres de mortiño mediante la proliferación de yemas axilares y su enraizamiento ex vitro. Para los ensayos de micropropagación se utilizaron como fuente de explantes miniestacas inducidas a través de podas. Después de estandarizar el protocolo de desinfección, se evaluó el efecto de diferentes concentraciones de 2-isopenteniladenina (2-iP) sobre la proliferación en el medio de cultivo basal WPM sobre la proliferación. El enraizamiento se realizó bajo condiciones ex vitro con ácido indolbutírico (AIB). En la etapa de proliferación se utilizó la concentración de 5 mg/l de 2-iP, que aunque presentó un menor número de brotes (2,1 a 1,7 por explante) respecto a la concentración de 20 mg/l de 2-iP, estos fueron de origen axilar y de mayor altura. Cada subcultivo se realizó con una periodicidad de 30 días. Estos brotes enraizaron entre el 66,6 y 80% bajo condiciones ex vitro con 2.000 mg/l de AIB y tuvieron una supervivencia del 82,7%. El proceso de enraizamiento ex vitro hasta la obtención de plantas competentes listas para sembrar en campo dura tres meses.

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Biografía del autor/a

Dagoberto Castro-Restrepo, Universidad Católica de Oriente

Unidad de Biotecnología

Jairo A. Álvarez-Guzmán, Universidad Católica de Oriente

Unidad de Biotecnología

Citas

Avila HG, Cuspoca JA, Fischer G, Ligarreto GA, Quicazán MC. 2007. Caracterización fisicoquímica y organoléptica del fruto de Agraz (Vaccinium meridionale Swartz) almacenado 1 a 2 °C. Revista

Facultad Nacional de Agronomía Medellín, 60 (2): 4179-4193.

Carrazana D, León A, Herrera L, Alvarado Y, Quiñones R. 1997. Efecto de diversos fungicidas comerciales sobre hongos contaminantes en biofábricas. Centro Agrícola, 1: 61-66.

Cruz M, Acosta M, Leiva M, Alvarado Y, Lezcano M. 2002. Evaluación del efecto del complejo carbendazim-β- ciclodextrina para el control de hongos filamentosos contaminantes del cultivo in vitro de plantas.

Biotecnología Vegetal, 2 (2): 73-76.

Deberg C, Coster G, Steubaut W. 1993. Carbendazim as an alternative growth regulator in tissue culture systems. In Vitro Cell Biology, 29 (2): 89-91.

Debnath SC. 2005. A two-step procedure for adventitious shoot regeneration from in vitro-derived lingonberry leaves: shoot induction with TDZ and shoot elongation using zeatin. HortScience, 40 (1): 189-192.

Debnath SC, McRae KB. 2002. An efficient shoot regeneration

system on excised leaves of micropropagated lingonberry (Vaccinium vitis-idaea L.). Journal of Horticultural Science Biotechnology, 77 (6): 744-752.

De Klerk GJ. 1990. How to measure somaclonal variation. Acta Botanica Neerlandica, 39 (2): 129-144.

Eccher T, Noé N. 1989. Comparison between 2-iP and zeatin in the micropropagation of highbush blueberry (Vaccinium corymbosum). Acta Horticulturae, 241: 185-190

Fogaca CM, Neto AF. 2005. Role of auxin and its modulators

in the adventitious rooting of Eucalyptus species differing in recalcitrance. Plant Growth Regulation, 45 (1): 1-10.

Ford YY, Bonham EC, Cameron RWF, Blake PS, Judd HL, Harrison-Murray RS. 2002. Adventitious rooting: examining the role of auxin in an easy- and difficult-to- root plant. Plant Growth Regulation, 36 (2): 149-159.

Fukui H, Murakami Y, Harada T, Tamura T. 1991. Response of highbush blueberry axillary leaf bud apices to growth regulators and its seasonal changes. Memory Faculty Agriculture, Hokkaido University, 15: 1-6.

Gonzalez M, Lopez M, Valdes E, Ordas RJ. 2000. Micropropagation of three berry fruit species using nodal segments from fieldgrown plants. Annals of Applied Biology, 137 (1): 73-78.

Jaakola L, Tolvanen A, Laine K, Hohtola A. 2002. Micropropagation of bilberry and lingonberry. Acta Horticulturae, 574: 401-403.

Litwinczuk W, Szczerba G, Wrona D. 2005. Field performance of highbush blueberries (Vaccinium corymbosum L.) cv. ‘Herbert’ propagated by cuttings and tissue culture. Scientia Horticulturae, 106 (2): 162-169.

Litwinczuk W, Wadas M. 2008. Auxin-dependent development and habituation of highbush blueberry (Vaccinium covilleanum But. et Pl.) ‘Herbert’ in vitro shoot cultures. Scientia Horticulturae, 119 (1): 41-48.

Lloyd GB, McCown BH. 1981. Commercially feasible micropropagation of mountain laurel Kalmia latifolia by use of shoot tip culture. Procedure for International Plant Propagation Society, 30: 421-427.

Marcotrigiano M, McGlew SP. 1991. A two-stage micropropagation system for cranberries. Journal of the American Society for Horticultural Science, 116 (5): 911-916.

McCown BH. 2000. Recalcitrance of woody and herbaceous perennial plants: Dealing with genetic predeterminism. In Vitro Cellular and Developmental Biology, 36 (3): 149-154.

Medina C, Matus JT, Zúñiga M, San-Martín C, Arce-Johnson P. 2006. Occurrence and distribution of viruses in commercial plantings of Rubus, Ribes and Vaccinium species in Chile. Ciencia e Investigación Agraria, 33 (1): 23-28.

Meiners J, Schwab M, Szankowski I. 2007. Efficient in vitro regeneration systems for Vaccinium species. Plant Cell Tissue and Organ Culture, 89 (2): 169-176.

Ostrolucká MG, Libiaková G, Ondrusková E, Gajdosová A. 2004. In vitro propagation of Vaccinium species. Acta Universitatis Latviensis Biology, 676: 207-212.

Pereira MJ. 2009. Reversion to juvenility: the use of epicormics in the micropropagation of mature wild shrubs of Vaccinium cylindraceum Smith (Ericacaeae). Arquipélago Life and Marine Sciences, 26: 63-68.

Rashotte AM, Poupart J, Candace SW, Muday GK. 2003. Transport of the acid and indole -3-butiric acid, in Arabidopsis. Plant Physiology, 133: 761-772.

Qaddoury A, Amssa M. 2004. Effect of exogenous indole butyric acid on root formation and peroxidase and indole-3-acetic acid oxidase activities and phenolic contents in date Palm offshoots. Botanical Bulletin of Academia Sinica, 45 (2): 127-131.

Rache LC, Pacheco JM. 2010. Propagación in vitro de plantas adultas de Vaccinium meridionale (Ericaceae). Acta Botanica Brasilica, 24 (4): 1086-1095.

Ross J, O ́Neill D. 2001. New interactions between classical plant hormones. Trends Plant Science, 6 (1): 2-4.

Trevisan R, Cezar RF, Fritsche RN, da Silva RG, Dias EG, Corrêa A. 2008. Enraizamento de estacas herbáceas de mirtilo: influência da lesão na base e do ácido indolbutírico. Ciência e agrotecnologia, Lavras, 32 (2): 402-406.

Vallejo DA. 2000. Fomento al mortiño (Vaccinium meridionale) como especie promisoria del Parque Regional Arví. Corantioquia.

Vander Kloet SP, Dickinson TA. 2009. A subgeneric classification of the genus Vaccinium and the metamorphosis of V. section Bracteata Nakai: more terrestrial and less epiphytic in habit; more continental

and less insular in distribution. Journal Plant Research, 122 (3): 253-268.

Tetsumura T, Matsumoto Y, Sato M, Honsho Ch, Yamashita K, Komatsu H, Sugimoto Y, Kunitake H. 2008. Evaluation of basal media for micropropagation of four highbush blueberry cultivars. Scientia Horticulturae, 119 (1): 72-74.

Publicado
2017-10-18
Cómo citar
Castro-Restrepo D., & Álvarez-Guzmán J. A. (2017). Micropropagación clonal de tres genotipos mortiño, <i>Vaccinium meridionale</i&gt; SW., por proliferación de yemas axilares. Actualidades Biológicas, 35(99), 135-144. Recuperado a partir de https://revistas.udea.edu.co/index.php/actbio/article/view/329114
Sección
Artículos completos