Propagación <i>in vitro</i> y desdiferenciación tisular en <i>Lippia dulcis</i>

Aura I. Urrea; Paula A. Castrillón; Zulma Monsalve

doi:10.17533/udea.acbi.4726

Autores

Aura I. Urrea Universidad de Antioquia
Paula A. Castrillón Universidad de Antioquia
Zulma Monsalve Universidad de Antioquia

DOI:

https://doi.org/10.17533/udea.acbi.4726

Palavras-chave:

callos, Lippia dulcis, micropropagación, suspensión celular

Resumo

Se describe una metodología para el establecimiento, la multiplicación y la obtención in vitro de callos de Lippia dulcis (Verbenaceae). Adicionalmente, se logró el establecimiento de una suspensión celular. Se utilizaron como explantes iniciales yemas apicales y segmentos nodales de plantas mantenidas en casa malla. El tratamiento más efectivo para el establecimiento y multiplicación de L. dulcis a partir de yemas apicales o segmentos nodales fue el medio Ms libre de reguladores de crecimiento. Para lograr la textura y color adecuados, el medio para formación y multiplicación de callos (Ms suplementado con 2,4d 0,1 mg/l) requiere ser renovado cada 20 días. El establecimiento de la suspensión celular, con alto porcentaje de viabilidad, fue posible en el medio de cultivo Ms y la combinación hormonal 2,4 d (0,5 mg/l) + Kinetina (0,1 mg/l).

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Referências

abe, fumiko, nagao t, okabe H. 2002. antiproliferative constituents in plants 9.1) aerial parts of Lippia dulcis and Lippia canescens. Biological & pharmaceutical Bulletin, 25 (7): 920-922.

Azcon-Bieto J, Talón M. 2000. Fundamentos de fisiología vegetal. Barcelona (españa): Mcgraw Hill. p.522.

Capote a, fuentes V, Blanco n, pérez o. 1999. Micropropa-gación y regeneración de plantas in vitro de oreganillo Lippia micromera schau. in dC. Var. helleri (Brito). revista del Jardín Botánico nacional, XX:139-142.

Collin Ha, edwards s. 1998. plant cell culture. oxford: Bios Scientific Publishers.Compadre CM, Hussain ra, lópez de Compadre rl, pez-zuto JM, Kinghorn da. 1987. the intensely sweet sesquiterpene hernandulcin: isolation, sintesis, charac-terization, and preliminary safety evaluation. Journal of agricultural and food Chemistry, 35: 273-279.

Compadre CM, pezzuto JM, Kinghorn ad. 1985. Hernandulcin: an intensely sweet compound discovered by review of ancient literature. science, 227: 417-419.

Compadre CM, robbins ef, Kinghoran ad. 1986. the intensely sweet herb, Lippia dulcis trev.: Historical uses, field inquiries and constituents. Journal of ethnopharmacology, 15 (1): 89-106.

de Block M. 1988. genotype-independent leaf disc transformation of potato (solanum tuberosum) using Agrobacterium tumefaciens. theoretical and applied genetics, 76: 767-774.

gupta sK, Khanuja sps, Kumar s. 2001. In vitromicropropagation of Lippia alba. Current science, 81: 206-210.

Hulme Js, Higgins es, shields r. 1992. an efficient genotype-independent method for regeneration of potato plants from leaf tissue. plant Cell, tissue and organ Culture, 31: 161-167.

J u l i n i H J r, K o r o c h a , J u l i n i H , tr i p p i V. 1 9 9 9 . Micropropagation of Lippia junelliana (Mold) tronc. plant Cell, tissue and organ Culture, 59: 175-179.

Kaneda n, lee i, gupta M, soejarto dd, Kinghorn ad. 1992. (+)4β-hydroxyhernandulcin, a new sweet sesquiterpene from the leaves and flowers of Lippia dulcis. Journal of natural products, 55 (8): 1136-1141.

Kinghorn ad, ito aiko, Kennelly e, Kim nC, Wetenburg. 1998. studies on some edible and medicinal plants of mesoamerica. proceedings of the Western pharmacology society, 41: 253-258.

Kinghorn ad, soejarto dd. 2002. discovery of terpenoid and phenolic sweeteners from plants. pure and applied Chemistry, 74 (7): 1169-1179.

Mollers C, Zhang JS, Wenzel G. 1991. The influence of silver thiosulfate on potato protoplast cultures. plant Breeding, 108 (1): 12-18.

Masateru o, Morinaga H, Masuoka C, ikeda t, okawa M, Kinjo J, nohara t. 2005. new Bisabolane-type sesquiterpenes from the aerial parts of Lippia dulcis. notes. Chemical & pharmaceutical Bulletin, 53 (9): 1175-1177.

Murashige t, skoog f. 1962. a revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. physiologia plantarum 15: 473-497.

paniego nB. gullieti aM. 1996. artemisin production by Artemisia annua l. —transformed organ cultures. enzyme and Microbial technology, 18: 526-530.

pascual Me, slowing K, Carretero e, sánchez M, Villar a. 2001. Lippia: tradicional uses, chemistry and pharmacology: a review. Journal of ethnopharmacology, 76: 201-214.

pereira-peixoto pH, gonçalves-salimena fr, oliveira-santos M de, silva-garcia l da, oliveira-pierre pM de, facio-Viccini l, Campos-otoni W. 2006. In vitro propagation of endangered Lippia filifolia Mart. and schauer ex schauer. in Vitro Cellular & developmental Biology, 42: 558-561.

pérez Jn. 1998. propagación y mejora genética de plantas por biotecnología. santa Clara (Cuba): instituto de biotecnología de las plantas, ed. p. 390.

pérez s, Meckes C, pérez C, susunaga a, Zavala Ma. 2005. Anti-inflammatory activity of Lippia dulcis. Journal of ethnopharmacology, 102: 1-4.

ramachandra-rao s, ravishankar ga. 2002. plant cell cultures: chemical factories of secondary metabolites. Biotechnology advances, 20: 101-153.

sauerwein M, flores He, Yamazaki t, shimomura K. 1991b. Lippia dulcis shoot cultures as a source of the sweet sesquiterpene hernandulcin. plant Cell reports, 9 (10): 663-666.

sauerwein Martina, Yamazaki t, shimomura K. 1991a. Hernandulcin in hairy root cultures of Lippia dulcis. plant Cell reports, 9 (10): 579-581.

savitha B, thimmaraju r. Bhagyalakshmi n, ravishankar G. 2006. Different biotic and abiotic elicitors influence betalain production in hairy root cultures of Beta vulgarisin shake-flask and bioreactor. Process Biochemestry, 1 (4): 50-60.

shinde an, Malpathak n, fulzele dp.2009. studied enhancement strategies for phytoestrogens production in shake flasks by suspension culture of psoralea corylifolia. Bioresource technology, 100: 1833-1839.

souto fa, echeverría M, Cárdenas o, acuña M, Meléndez p, romero l. 1997. terpenoid composition of Lippia dulcis. phytochemistry, 44 (6): 1077-1086.

Urreaai, Veitía n, Bermúdez i. 2001. selección invitrode callos de papa (solanum tuberosum ) var. diacol Capiro empleando el filtrado crudo de phytophthora infestans (mont) de Bary. actualidades Biológicas, 23 (74): 5-13.

Veitia n, garcía l, Clavero J, Urrea ai. 1999. desarrollo de diferentes medios de cultivo para la formación de callos de papa. revista del Centro agrícola, iii/99.

Young-am Chae, Hee-suk Yu, Ji-sook song, Hee-Kyung Chun, sang-Un park. 2000. indigo production in hairy root cultures of polygonum tinctorium lour. Biotechnology letters, 22: 1527-1530.

Zhao J, davis lC, Verpoorte r. 2005. elicitor signal transduction leading to production of plant secondary metabolites. Biotechnology advances, 23: 283-333.