Comparación de tres procedimientos de muestreo para evaluar vellosidades intestinales: modelo porcino

Autores/as

  • Mateo Itza-Ortiz Universidad Autónoma de Ciudad Juárez
  • Andrés Quezada-Casasola Universidad Autónoma de Ciudad Juárez
  • Yamicela Castillo-Castillo Universidad Autónoma de Ciudad Juárez
  • Elizabeth Rodríguez-Galindo Investigación Aplicada S.A. de C.V.
  • José María Carrera-Chávez Universidad Autónoma de Ciudad Juárez
  • Ubicelio Martín-Orozco Universidad Autónoma de Ciudad Juárez
  • Esaúl Jaramillo-López Universidad Autónoma de Ciudad Juárez
  • Ana Calzada-Nieves Universidad Autónoma de Ciudad Juárez

DOI:

https://doi.org/10.17533/udea.rccp.v31n1a01

Palabras clave:

histopatología, anudamiento, muestreo, conservación tisular

Resumen

Antecedentes: La morfología y función de las vellosidades afectan la capacidad de absorción del intestine delgado. La mayoría de los tejidos son frágiles y su morfología puede cambiar con una manipulación excesiva y técnicas de muestreo inadecuadas. El muestreo intestinal incluye metodologías tales como el corte longitudinal o transversal, conservando el contenido intestinal y conservando todo en una solución de formol al 10%; lavado de la muestra de intestino en solución salina mientras se vacía, presionándola hacia abajo con dos dedos, conservando la muestra en solución de formol al 10% y anudando ambos extremos de la muestra, introduciendo en ella formol al 10% y preservándola en la misma solución. Objetivo: Comparar la altura, área y descamación causada por el lavado, presión y anudamiento utilizados en la toma de muestras y técnicas de conservación utilizadas en vellosidades intestinales en cerdos. Métodos: Se obtuvieron 270 muestras de duodeno, yeyuno e íleon de 30 cerdos cruzados Landrace × Yorkshire de 7 a 8 meses de edad, y se sometieron aleatoriamente a procedimientos de lavado, prensado suave o anudado y fueron fijados en solución de formol al 10%, procesados por inclusión en parafina y teñidos con eosina y hematoxilina. Se observaron las vellosidades intestinales de cada muestra para determinar su altura, la superficie de cada vellosidad y la descamación celular. Resultados: La altura de las vellosidades de las muestras anudadas de duodeno e íleon fue mayor (p < 0,05) que las muestras de los otros procedimientos en la misma porción anatómica, las cuales fueron similares entre sí (p > 0,05). Las vellosidades procedentes de muestras de nudos de yeyuno fueron las más cortas (p < 0,05) en comparación con los otros dos procedimientos, que fueron similares entre sí (p > 0,05). Las muestras anudadas del íleon presentaron mayor área de vellosidades que el resto de los procedimientos y porciones intestinales (p < 0,05). La descamación de las vellosidades fue similar en todos los procedimientos y porciones del intestino (p > 0,05). Conclusión: El procedimiento de anudamiento es el recomendado para la evaluación morfométrica de células intestinales, considerando que los valores de altura y área de las vellosidades son mayores. La observación de la descamación en los tres procedimientos puede estar relacionada con un proceso de restauración epitelial.

|Resumen
= 350 veces | PDF (ENGLISH)
= 179 veces|

Descargas

Los datos de descargas todavía no están disponibles.

Biografía del autor/a

Mateo Itza-Ortiz, Universidad Autónoma de Ciudad Juárez

Dr., Departamento de Ciencias Veterinarias, Universidad Autónoma de Ciudad Juárez, Ciudad Juárez, Chihuahua, México.

Andrés Quezada-Casasola, Universidad Autónoma de Ciudad Juárez

Dr., Departamento de Ciencias Veterinarias, Universidad Autónoma de Ciudad Juárez, Ciudad Juárez, Chihuahua, México.

Yamicela Castillo-Castillo, Universidad Autónoma de Ciudad Juárez

PhD., Departamento de Ciencias Veterinarias, Universidad Autónoma de Ciudad Juárez, Ciudad Juárez, Chihuahua, México.

Elizabeth Rodríguez-Galindo, Investigación Aplicada S.A. de C.V.

MVZ., Investigación Aplicada S.A. de C.V., Tehuacán, Puebla, Mexico.

José María Carrera-Chávez, Universidad Autónoma de Ciudad Juárez

Dr., Departamento de Ciencias Veterinarias, Universidad Autónoma de Ciudad Juárez, Ciudad Juárez, Chihuahua, México.

Ubicelio Martín-Orozco, Universidad Autónoma de Ciudad Juárez

MC., Departamento de Ciencias Veterinarias, Universidad Autónoma de Ciudad Juárez, Ciudad Juárez, Chihuahua, México.

Esaúl Jaramillo-López, Universidad Autónoma de Ciudad Juárez

Dr., Departamento de Ciencias Veterinarias, Universidad Autónoma de Ciudad Juárez, Ciudad Juárez, Chihuahua, México.

Ana Calzada-Nieves, Universidad Autónoma de Ciudad Juárez

MC., Departamento de Ciencias Veterinarias, Universidad Autónoma de Ciudad Juárez, Ciudad Juárez, Chihuahua, México.

Citas

Arce MJ, Ávila GE, Lopez CC. Comportamiento productivo y cambios morfológicos en vellosidades intestinales del pollo de engorda a 21 días de edad con el uso de paredes celulares del Saccharomycescerevisiae. Vet Méx 2008; 39(2):223-228.

Assis RCL, Luns FD, Beletti ME, Assis RL, Nasser NM, Faria EM, Cury MC. Histomorphometry and macroscopic intestinal lesions in broilers infected with Eimeria acervulina. Vet parasitol 2010; 168(3):185-189.

Bravo GM. Manual de procedimientos y técnicas histopatológicas. Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia-Universidad Michoacana de San Nicolás de Hidalgo. Morelia, Michoacán, México. 2011.

Gartner LP, Hiatt JL. Texto Atlas de Histología. 2nd ed. McGraw Hill-Interamericana. 2002.

Hedemann MS, Mikkelsen LL, Naughton PJ, Jensen BB. Effect of feed particle size and feed processing on morphological characteristics in the small and large intestine of pigs and on adhesión of Salmonella entérica serovar Typhimuriumm DT12 in the ileum in vitro. J Anim Sci 2005; 83:1554-1562.

Horn N, Ruch F, Miller G, Ajuwon KM, Adeola O. Impact of acute water and feed deprivation events on growth performance, intestinal characteristics, and serum stress markers in weaned pigs. J Anim Sci 2014; 92(10):4407-4416.

Huygelen V, De Vos M, Willemen S, Fransen E, Casteleyn C, Van Cruchten S, Van Ginneken C. Age-related differences in mucosal barrier function and morphology of the small intestine in low and normal birth weight piglets. J Anim Sci 2014; 92(8):3398-3406.

Itza-Ortiz MF, Lopez-Coello C, Avila-Gonzalez E, Gomez-Rosales S, Arce-Menocal J, Velazquez-Madrazo P. Efecto de la fuente energética y el nivel de energía sobre la longitud de vellosidades intestinales, la respuesta inmune y el rendimiento productivo en pollos de engorda. Vet Mexico 2008; 39(4):357-376.

Jensen TK, Boensen HT, Vigre H, Boye M. Detection of Lawsonia intracellularis in formalin-fixed porcine intestinal tissue samples: Comparison of immunofluorescence and in-situ hybridization, and evaluation of the effects of controlled autolysis. J Comp Path 2010; 142:1-8.

Jung K, Saif LJ. Goblet cell depletion in small intestinal villous and crypt epithelium of conventional nursing and weaned pigs infected with porcine epidemic diarrhea virus. Res Vet Sci 2017; 110:12-15.

Marchini CFP. Efeito da temperatura ambiente cíclica elevada sobre os parâmetros produtivos, fisiológicos, morfométricos e proliferação celular da mucosa intestinal de frango de corte. Vet Noticias 2005; 12(2):63-64.

Marchini CFP, Lourenço da Silva P, Bueno de Mattos Nascimento MA. Body weight, intestinal morphometry and cell proliferation of broiler chickens submitted to cyclic heat stress. Int J Poult Sci 2011; 10(6):455-460.

Narváez ADJ. La microscopía: Herramienta para estudiar células y tejidos [Access date: March 3, 2015]. URL: http://www.medic.ula.ve/histologia/anexos/microscopweb/MONOWEB/anexos/MIcrografiasInterpretacion3D/artificios.htm

Neog BK, Barman NN, Bora DP, Dey SC, Chakraborty A. Experimental infection of pigs with group A rotavirus and enterotoxigenic Escherichia coli in India: Gross, histopathological and immunopathological study. Vet Ital 2011; 47(2):117-128.

Roa I, Meruane M. Desarrollo del Aparato Digestivo. Int J Morph 2012; 30(4):1285-1294.

Rubio LA, Ruiz R, Peinado MJ, Echeverri A. Morphology and enzymatic activity of the small intestinal mucosa of Iberian pigs as compared with a lean pig strain. J Anim Sci 2010; 88:3590-3597.

SAS. 2013. SAS/STAT User’s guide (Version 9.4). Cary, NC: SAS Institute Inc.

Schweer WP, Pearce SC, Burrough ER, Schwartz K, Yoon KJ, Sparks JC, Gabler NK. The effect of porcine reproductive and respiratory syndrome virus and porcine epidemic diarrhea virus challenge on growing pigs II: Intestinal integrity and function. J Anim Sci 2016; 94(2):523-532.

Segalés J, Domingo M. La necropsia en el ganado porcino; Diagnóstico anatomopatológico y toma de muestras. 1st ed. Madrid, Spain: Boehringer Ingelheim; 2003.

Sisson S, Grossman JD. Anatomía de los animales domésticos. 5th ed. Barcelona, Spain: Salvat Editors; 2002.

Skrzypek T, Valverde-Piedra JL, Skrzypek H, Kazimierczak W, Szymanczyk SE, & Zabielski R. Changes in pig small intestinal absorptive area during the first 14 days of life. Livest Sci 2010; 133:53-56.

Tsukahara T, Kishino E, Inoue R, Nakanishi N, Nakayama K, Ito T, Ushida K. Correlation between villous height and the disaccharidase activity in the small intestine of piglets from nursing to growing. Anim Sci J 2012; 84(1):54-59.

Velasco S, Alzueta MC, Rodríguez ML, Rebolé A, Ortiz LT. Los prebióticos tipo inulina en alimentación aviar I: características y efectos a nivel intestinal. Rev Complutense C Vet 2010; 4(2):87-104.

Venne P, John-Baptiste A, Vitsky A. Post-mortem histological artifacts created by poor tissue handling during necropsy. J Histotech 2014; 37(2):43-47.

Wick MR. Diagnostic Histochemistry. 1st ed. New York, NY. Cambridge University Press. 2008.

Yunusova RD, Neville TL, Vonnahme KA, Hammer CJ, Reed CJ, Taylor JB, Redmer DA, Reynolds LP, Caton JS. Impacts of maternal selenium supply and nutritional plane on visceral tissues and intestinal biology in 180-day-old offspring in sheep. J Anim Sci 2013; 91(5):2229-2242.

Descargas

Publicado

2018-03-21

Cómo citar

Itza-Ortiz, M., Quezada-Casasola, A., Castillo-Castillo, Y., Rodríguez-Galindo, E., Carrera-Chávez, J. M., Martín-Orozco, U., Jaramillo-López, E., & Calzada-Nieves, A. (2018). Comparación de tres procedimientos de muestreo para evaluar vellosidades intestinales: modelo porcino. Revista Colombiana De Ciencias Pecuarias, 31(1), 3–9. https://doi.org/10.17533/udea.rccp.v31n1a01

Número

Sección

Artículos Originales de investigación