O método de desova afeta a eficiência reprodutiva de piracanjuba (Brycon orbignyanus) em programas de repovoamento

Autores

  • Pedro L. de Castro Universidade Estadual de Mato Grosso do Sul
  • Nelson M. Lopera-Barrero Universidade Estadual de Londrina
  • Elenice S. dos Reis-Goes Universidade Federal da Grande Dourados
  • Felipe P. de Souza Universidade Estadual de Londrina
  • Satia C. Bomfim Universidade Estadual de Mato Grosso do Sul
  • André L. Julien-Ferraz Universidade Estadual de Mato Grosso do Sul
  • Ricardo P. Ribeiro Universidade Estadual de Maringá

DOI:

https://doi.org/10.17533/udea.rccp.v34n1a03

Palavras-chave:

aquicultura, Brycon orbignyanus, desova, desova por extrusão, diversidade genética, eclosão, eficiência reprodutiva, fertilização, incubação, marcadores microsatélites, mortalidade, peixe, repovoamento, reprodutores

Resumo

Antecedentes: A manutenção da diversidade genética dos peixes selvagens é uma importante consideração para programas de repovoamento, já que a endogamia pode comprometer a sobrevivência da progênie, além de impactar na resiliência das populações naturais. Objetivo: Avaliar a influência do método de desova (semi-natural – SN ou por extrusão – ST) e número de reprodutores (1♀:3♂ e 2♀:6♂) na eficiência reprodutiva e na diversidade genética de progênie de B. orbignyanus destinados à recuperação de estoques selvagens. Métodos: Taxas de fertilização, eclosão e mortalidade de reprodutores foram monitorados. Para avaliações genéticas (frequências alélicas, heterozigosidade observada e esperada, índice de Shannon, coeficiente de endogamia, análise de variância molecular e diferenciação genética), reprodutores (n=24) e sua progênie (90 larvas/tratamento) foram amostrados e analisados utilizando oito marcadores microssatélites. Resultados: Interação entre método de desova e número de reprodutores não foi significante (p>0,05). Melhores taxas de fertilização e eclosão (p<0,05), e menor (p<0,05) mortalidade de reprodutores foram observados para o método SN, enquanto que o número de reprodutores não afetou esses parâmetros (p>0,05). Os loci microssatélites amplificados produziram um total de 30 alelos, com tamanhos entre 80 e 225 pb e suas frequências indicaram aumento (p<0,05) da diversidade genética nas progênies, mas baixa diferenciação genética entre os tratamentos (p>0,05). Conclusão: Os métodos de desova e números de reprodutores avaliados aumentaram igualmente a diversidade genética das progênies, com baixa diferenciação genética entre tratamentos. Em contraste, as taxas de fecundação, eclosão e mortalidade de reprodutores revelaram que SN obteve a melhor eficiência reprodutiva, fato relacionado com o estresse de manipulação e injurias causadas por ST. Por isso, SN se mostrou como o método de desova mais adequado para B. orbignyanus em programas de repovoamento.

|Resumo
= 564 veces | PDF (ENGLISH)
= 415 veces| | HTML (ENGLISH)
= 0 veces|

Downloads

Não há dados estatísticos.

Biografia do Autor

Pedro L. de Castro, Universidade Estadual de Mato Grosso do Sul

https://orcid.org/0000-0001-7351-6938
Programa de Pós-Graduação em Zootecnia, Universidade Estadual de Mato Grosso do Sul, Aquidauana, Mato Grosso do Sul, Brasil.

Nelson M. Lopera-Barrero, Universidade Estadual de Londrina

https://orcid.org/0000-0002-7154-5134
Programa de Pós-Graduação em Zootecnia, Universidade Estadual de Londrina, Londrina, Paraná, Brasil.

Elenice S. dos Reis-Goes, Universidade Federal da Grande Dourados

https://orcid.org/0000-0003-2437-4800
Departamento de Engenharia Pesqueira, Universidade Federal da Grande Dourados, Dourados, Mato Grosso do Sul, Brasil.

Felipe P. de Souza, Universidade Estadual de Londrina

https://orcid.org/0000-0003-3436-4147
Programa de Pós-Graduação em Zootecnia, Universidade Estadual de Londrina, Londrina, Paraná, Brasil.

Satia C. Bomfim, Universidade Estadual de Mato Grosso do Sul

https://orcid.org/0000-0002-6615-7700
Programa de Pós-Graduação em Zootecnia, Universidade Estadual de Mato Grosso do Sul, Aquidauana, Mato Grosso do Sul, Brasil.

André L. Julien-Ferraz, Universidade Estadual de Mato Grosso do Sul

https://orcid.org/0000-0002-0538-2867
Programa de Pós-Graduação em Zootecnia, Universidade Estadual de Mato Grosso do Sul, Aquidauana, Mato Grosso do Sul, Brasil.

Ricardo P. Ribeiro, Universidade Estadual de Maringá

https://orcid.org/0000-0001-7752-3692
Departamento de Zootecnia, Universidade Estadual de Maringá, Maringá, Paraná, Brasil.

Referências

Barroso RM, Hilsdorf AWS, Moreira HLM, Mello AM, Guimarães SEF, Cabello PH, Traub-Cseko YM. Identification and characterization of microsatellites loci in Brycon opalinus (Cuvier, 1819) Characiforme, Characidae, Bryconiae. Mol Ecol Notes 2003; 3(2):297–298. DOI: http://10.1046/j.1471-8286.2003.00435.x

Bassam BJ, Caetano-Anollés G, Gresshoff PM. Fast and sensitive silver staining of DNA in polyacrylamide gels. Anal Biochem 1991; 196(1):80–3. DOI: https://doi.org/10.1016/0003-2697(91)90120-I

Bignardi AB, Povh JA, Alves MS, Goes ESR, Filho RAC, Castro RJ, Lopera-Barrero NM. Genetic variability of Brycon hilarii in a repopulation program. Braz Arch Biol Technol 2006, 59(1):1–9. DOI:http://dx.doi.org/10.1590/1678-4324-2016160102

Castro PL, Lewandowski V, Souza FP, Sary C, Leite NG, Lopera-Barrero NM, Ribeiro RP. Genetic variability of larvae and fingerlings of Piracanjuba (Brycon orbignyanus). Arq Bras Med Vet Zootec 2019; 71(2):696–702. DOI: http://dx.doi.org/10.1590/1678-4162-10312

Chapuis M, Estoup A. Microsatellite null alleles and estimation of population differentiation. Mol Biol Evol 2007; 24(3):621–631. DOI: https://doi.org/10.1093/molbev/msl191

Excoffier L, Laval G, Schneider S. Arlequin ver. 3.0: An integrated software package for population genetics data analysis. Evol Bioinform Online 2005; 1(1):47–50.

Ferreira EB, Cavalcanti PP, Nogueira DA. ExpDes: experimentais designs package. R package version 1.1.2 2013; [Nov. 8 2016]. URL: http://CRAN.R-project.org/package=ExpDes

Godinho HP. Estratégias reprodutivas de peixes aplicadas à aquicultura: bases para o desenvolvimento de tecnologias de produção. Rev Bras Reprod Anim 2007; 31(3):351–360.

Goudet J. FSTAT Version 2.9.4.: A Program to Estimate and Test Population Genetics Parameters. 2005; [access date: 03/05/2020]. URL:http://www2.unil.ch/popgen/softwares/fstat.htm

Henriques R, Nielsen ES, Durholtz D, Japp D, Von Der Heyden S. Genetic population sub-structuring of kingklip (Genypterus capensis - Ophidiidiae), a commercially exploited demersal fish off South Africa. Fish Res 2017; 187(1):86–95. DOI:http://dx.doi.org/10.1016/j.fishres.2016.11.007

Lopera-Barrero NM, Povh JA, Ribeiro RP, Gomes PC, Jacometo CB, Lopes TS. Comparison of DNA extraction protocols of fish fin and larvae samples: modified salt (NaCl) extraction. Cienc Investig Agrar 2008; 35(1):65–74. DOI:http://dx.doi.org/10.4067/S0718-16202008000100008

Lopera-Barrero NM, Vargas L, Sirol RN, Ribeiro RP, Povh JA, Mangolin CA. Caracterização genética de Brycon orbignyanus utilizando o sistema seminatural. Arq Bras Med Vet Zootec 2010; 62(1):184–191. DOI:http://dx.doi.org/10.1590/S0102-09352010000100025

Lopera-Barrero NM, Alvarez CAR., Rodriguez-Rodriguez MP, Povh JA, Vargas L, Streit Jr DP, Sirol RN, Ribeiro RP. Genetic diversity and paternity of Brycon orbignyanus offspring obtained for different reproductive systems. Semin Cienc Agrar 2014; 35(1):541–554. DOI:http://dx.doi.org/10.5433/1679-0359.2014v35n1p541

Lopera-Barrero NM, Povh JA, Sirol RN, Rodriguez-Rodriguez MP, Lima ES, Poveda-Parra AR, Souza FP, Murari PJF, Otonel RAA, Ribeiro RP. Genetic diversity of pacu and piapara broodstocks in restocking programs in the rivers Paraná and Paranapanema (Brazil). Semin Cienc Agrar 2016; 37(4):2365–2374. DOI:http://dx.doi.org/10.5433/1679-0359.2016v37n4Supl1p2365

Matsumoto CK, Hilsdorf AWS. Microsatellite variation and population genetic structure of a neotropical endangered Bryconinae species Brycon insignis Steindachner, 1877: implications for its conservation and sustainable management. Neotrop Ichthyol 2009; 7(3):395–402. DOI:http://dx.doi.org/10.1590/S1679-62252009000300006

Raymond M, Rousset F. An exact test for population differentiation. Evolution 1995; 49(6): 1280–1283. DOI:https://doi.org/10.1111/j.1558-5646.1995.tb04456.x

Reynalte-Tataje DA, Lopes CA, Ávila-Simas S, Garcia JRE, Zaniboni-Filho E. Artificial reproduction of neotropical fish: Extrusion or natural spawning? Nat Sci 2013; 5(7):1–6. DOI: http://dx.doi.org/10.4236/ns.2013.57A001

Romana-Eguia MRR, Minoru I, Basiao ZU, Taniguchi N. Genetic diversity in farmed Asian Nile and red hybrid tilapia stocks evaluated from microsatellite and mitochondrial DNA analysis. Aquaculture 2004; 236(4):131–150. DOI:https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2004.01.026

Samarin MA, Policar T, Lahnsteiner F. Fish Oocyte Ageing and its Effect on Egg Quality. Rev Fish Sci 2015; 23(3):302–314. DOI:https://10.1080/23308249.2015.1053560

Sanches A, Galetti PM. Microsatellites loci isolated in the freshwater fish Brycon hilarii. Mol Ecol Notes 2006; 6(4):1045–1046. DOI:https://doi.org/10.1111/j.1471-8286.2006.01427.x

Sato Y, Fenerich-Verani N, Junior V, Godinho HP, Vieira L. Reprodução artificial do dourado Salminus brasiliensis (Pisces: Characidae) da bacia do rio São Francisco. Rev Bras Repro Ani 1997; 31(1):113–116.

Souza FP, Castro PL, Goes ESR, Ribeiro RP, Santos SCA, Lima ESC, Murari PJF, Lopera-Barrero NM. Genetic variability of Prochilodus lineatus in artificial and semi-natural reproduction. Ital J Anim Sci 2018; 17(2):321–325. DOI:https://doi.org/10.1080/1828051X.2017.1365312

Van Oosterhout C, Hutchinson WF, Wills DPM, Shipley P. MICRO-CHECKER: software for identifying and correcting genotyping errors in microsatellite data. Mol Ecol Notes 2004; 4(3):535–538. DOI:https://doi.org/10.1111/j.1471-8286.2004.00684.x

Wright S. Evolution and genetics of population. 1st ed. Chicago: University of Chicago Press; 1978. Zaniboni-Filho E, Nuñer APO. Fisiologia da reprodução e propagação artificial dos peixes. In: Cyrino JEP, Urbinati EC, Fracalossi DM, Castagnolli N, editores. Tópicos especiais em piscicultura de água doce tropical intensiva. 1st ed. São Paulo (SP): TecArt; 2004. p.45–73.

Zanoni MA, Costa FG, de Carvalho S, Seiva FRF. Physiological and biochemical changes of females of Piracanjuba, subjected to induced reproduction. J Anim Physiol Anim Nutr 2015; 100(4):673–679. DOI:https://doi.org/10.1111/jpn.12425

Zanoni MA, Carvalho S, Costa FG, Seiva FRF. Stress evaluation in dourado females (Salminus brasiliensis) submitted to two different methods of induced spawning. Int J Fish Aqua 2019; 11(5):97–103. DOI:https://10.0.23.9/IJFA2019.0726

Publicado

2020-06-17

Como Citar

de Castro, P. L., Lopera-Barrero, N. M., Reis-Goes, E. S. dos, de Souza, F. P., Bomfim, S. C., Julien-Ferraz, A. L., & Ribeiro, R. P. (2020). O método de desova afeta a eficiência reprodutiva de piracanjuba (Brycon orbignyanus) em programas de repovoamento. Revista Colombiana De Ciencias Pecuarias, 34(1), 29–39. https://doi.org/10.17533/udea.rccp.v34n1a03

Edição

Seção

Artigo original de pesquisa

Artigos mais lidos pelo mesmo(s) autor(es)