Metaanálisis de la validez del inmunodiagnóstico del virus linfotrópico de células T humanas I/II en bancos de sangre, 2000-2018
DOI:
https://doi.org/10.17533/udea.rfnsp.e343861Palabras clave:
banco de sangre, metaanálisis, prevención y control, pruebas inmunológicas, virus linfotrópico de células T humanas tipo I y tipo II (HTLV I/II)Resumen
Objetivo: Evaluar la validez del inmunodiagnóstico del HTLV I/II en bancos de sangre, con base en estudios publicados en la literatura científica. Metodología: Se efectuó un metaanálisis de pruebas diagnósticas siguiendo la guía prisma y las recomendaciones de Cochrane. Se evaluó la calidad metodológica con QUADAS y se garantizó la reproducibilidad y la exhaustividad. Se realizó también un análisis de efectos aleatorios para la sensibilidad, la especificidad, los cocientes de probabilidad, la razón de momios diagnóstica y la curva característica operativa del receptor (ROC) con sus intervalos de confianza (IC) del 95 %. Resultados: Se tamizaron 4604 estudios, de los cuales solo tres cumplieron el protocolo. Se evaluaron 548 infectados con HTLV I/II y 6643 sanos. El inmunodiagnóstico de HTLV I/II presentó una sensibilidad del 99 % (IC95 % = 98,0-99,0), especificidad del 100 % (IC 95 % = 99,9-100), cocientes de probabilidad positivo de 315,8 (IC95 % = 128,2-778,5) y negativo de 0,02 (IC95 % = 0,01-0,04), razón de momios diagnóstica de 24373 (IC95 % = 6864-86545) y área bajo la curva ROC del 99,9 %. Conclusión: Se dispone de pocos estudios en este campo del inmunodiagnóstico HTLV I/II. El elevado número de sujetos analizados evidenció alta validez del inmunodiagnóstico, lo que resulta determinante para garantizar la inocuidad de las unidades de sangre, la detección de portadores asintomáticos, la disminución de la transmisión y el inicio de tratamiento.
Descargas
Citas
(1). Segurado AA, Biasutti C, Zeigler R, et al. Identification of human T-lymphotropic virus type i (htlv-i) subtypes using restricted fragment length polymorphism in a cohort of asymptomatic carriers and patients with htlv-i-associated myelopathy/tropical spastic paraparesis from São Paulo, Brazil. Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 2002;97(3):329-33. DOI: https://doi.org/10.1590/S0074-02762002000300009
(2). Berini CA, Susana Pascuccio M, Bautista CT, et al. Comparison of four commercial screening assays for the diagnosis of human T-cell lymphotropic virus types 1 and 2. J Virol Methods. 2008;147(2):322-7. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jviromet.2007.09.012
(3). Kapprell H-P, Stieler M, Oer M, et al. Evaluation of a new third-generation architect rhtlv-i/ii assay for blood screening and diagnosis. Diagn Microbiol Infect Dis. 2010;67(1):61-69. DOI: https://doi.org/10.1016/j.diagmicrobio.2009.12.021
(4). Rivera C, López D, Zamora T, et al. Infección por el virus linfotrópico humano de células T tipo 1 (htlv-1) y paraparesia espástica. Avances y diagnóstico 35 años después de su descubrimiento. iatreia. 2017;30(2):146-59. DOI: https://doi.org/10.17533/udea.iatreia.v30n2a04
(5). Yun S, Kim S, et al. Evaluation of Elecsys htlv‐i/ii assay in comparison with architect rhtlv‐i/ii assay with Korean samples. J Clin Lab Anal. 2019; 33(6):e22909. DOI: https://doi.org/10.1002/jcla.22909
(6). Bermúdez-Forero MI, Berrío-Pérez M, Herrera-Hernández AM, et al. Prevalencia de la infección con el virus linfotrópico de células T humanas de tipo 1 y 2 en donantes de sangre en Colombia, 2001-2014: implicaciones sobre la seguridad de la transfusión. Biomédica. 2016;36(Supl. 2):194-200. DOI: https://doi.org/10.7705/biomedica.v36i0.2943
(7). Laperche S, Sauleda S, Piron M, et al. Evaluation of sensitivity and specificity performance of Elecsys htlv-i/ii assay in a multicenter study in Europe and Japan. J Clin Microbiol. 2017;55(7):2180-7. DOI: https://doi.org/10.1128/JCM.00169-17
(8). Da Silva B, Santos F, Gonçalves N, et al. Performance of commercially available serological screening tests for human T-cell lymphotropic virus infection in Brazil. J Clin Microbiol. 2018;56(12):e00961-18. DOI: https://doi.org/10.1128/JCM.00961-18
(9). Proietti F, Carneiro A, et al. Global epidemiology of htlv-i infection and associated diseases. Oncogene. 2005;24(39):6058-68. DOI: https://doi.org/10.1038/sj.onc.1208968
(10). Carneiro A, Catalan B, Castro C, et al. htlv in the Americas: Challenges and perspectives. Rev Panam Salud Pública. 2006;19(1):44-53. DOI: https://doi.org/10.1590/s1020-49892006000100007
(11). Moreno C, Balangero M, Barbás M, et al. Diagnóstico serológico de htlv-1/2: combinación de técnicas de tamizaje para definir el estatus serológico en donantes de sangre. Rev Argent Microbiol. 2013;45(3):165-8. DOI: https://doi.org/10.1016/S0325-7541(13)70019-1
(12). Morimoto H, Morimoto A, Reiche E, et al. Difficulties in the diagnosis of htlv-2 infection in hiv/aids patients from Brazil: Comparative performances of serologic and molecular assays, and detection of htlv-2b subtype. Rev Inst Med Trop São Paulo. 2007;49(4):225-30. DOI: https://doi.org/10.1590/s0036-46652007000400006
(13). Cardona J, Higuita L, Ríos Osorio L. Ejecución de revisiones sistemáticas y metaanálisis. En Revisiones sistemáticas de la literatura científica: la investigación teórica como principio para el desarrollo de la ciencia básica y aplicada (pp. 27-40). Bogotá: Ediciones Universidad Cooperativa de Colombia; 2016. DOI: http://dx.doi.org/10.16925/9789587600377
(14). Moher D, Liberati A, et al. Preferred reporting items for systematic reviews and meta‐analyses: The prisma Statement. PLos Med. 2009;6(7):e1000097. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pmed.1000097
(15). Higgins JPT, Green S (editors). Cochrane Handbook for Systematic Reviews of Interventions Version 5.1.0. London: The Cochrane Collaboration; 2011.
(16). Whiting PF, Rutjes AWS, Westwood ME, et al. quadas-2: A revised tool for the Quality Assessment of Diagnostic Accuracy Studies. Ann Intern Med. 2011;155(8):529-36. DOI: http://dx.doi.org/10.7326/0003-4819-155-8-201110180-00009
(17). Zamora J, Abraira V, Muriel A, et al. Meta-DiSc: A software for meta-analysis of test accuracy data. bmc Med Res Methodol. 2006;6:31 DOI: https://doi.org/10.1186/1471-2288-6-31
(18). Biglione M, Berini C. Aportes y consideraciones sobre la infección por los virus linfotrópicos-T humanos tipo 1 y 2 en Argentina. asei [internet]. 2013 [citado 2020 jul. 19]; 21(81):84-94. Disponible en: https://www.huesped.org.ar/wp-content/uploads/2014/11/ASEI-81-84-94.pdf
(19). Gessain A, Cassar O. Epidemiological aspects and world distribution of htlv-1 infection. Front Microbiol. 2012;3:388. DOI: https://doi.org/10.3389/fmicb.2012.00388
(20). Eusebio-Ponce E, Anguita E, et al. htlv-1 infection: An emerging risk. Pathogenesis, epidemiology, diagnosis and associated diseases. Rev Esp Quimioter. 2019;32(6):485-96. Epub 2019 Oct 25. pmid: 31648512; pmcid: PMC6913074.
(21). Torres D, Sierra F, Beltrán OA. Cuando la evidencia evalúa pruebas diagnósticas... ¿Qué debemos saber, qué debemos hacer? Rev Colomb Gastroenterol [internet]. 2004 [citado 2020 jul. 15]; 19(4);281-5. http://www.scielo.org.co/pdf/rcg/v19n4/v19n4a10.pdf
(22). Pasamontes J, Cabrera M, Delgado R, et al. Revisión sistemática y metaanálisis de la eficacia diagnóstica de la pet 18F-fdg en recurrencia tumoral de cánceres de cabeza y cuello. Acta Otorrinolaringol Esp. 2008;59(4):190-7. DOI: https://doi.org/10.1016/S0001-6519(08)73292-8
(23). Colombia, Ministerio de Salud y Protección Social. Resolución 437, por la cual se establece la práctica obligatoria de pruebas de anticuerpos contra el virus linfotrópico de células T humanas i/ii (htlv i/ii) y la detección de anticuerpos contra el antígeno core del virus de la hepatitis B (Anti HBc) (2014 feb. 14).
(24). Herrera A, García M, Bermúdez M. Anexo técnico 4. Circular 082 de 2011. Actualización de algoritmos para pruebas confirmatorias y complementarias (2019-06-14). Instituto Nacional de Salud de Colombia [internet]; 2011 [citado 2020 jun. 25]. Disponible en: https://www.ins.gov.co/Direcciones/RedesSaludPublica/DonacionSangre/NormatividadRelNalBancosSangro/Anexo%204%20Circular%20082%20de%202011.pdf
(25). Andrade R, Ribeiro M, Namen M, et al. Evaluation of the use of real-time pcr for human T cell lymphotropic virus 1 and 2 as a confirmatory test in screening for blood donors. Rev Soc Bras Med Trop. 2010;43(2):111-5. DOI: https://doi.org/10.1590/s0037-86822010000200001
(26). Iwanaga M. Epidemiology of htlv-1 Infection and atl in Japan: An update. Front Microbiol. 2020;29;11:1124. DOI: https://doi.org/10.3389/fmicb.2020.01124
(27). Cardona-Arias JA, Vélez-Quintero C, Calle-González OV, et al. Seroprevalence of human T-lymphotropic virus htlv and its associated factors in donors of a blood bank of Medellín-Colombia, 2014-2018. PLoS One. 2019;14(8):e0221060. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0221060
(28). Yousefi M, Sharifzadeh GR, Ebrahimzadeh A, et al. Prevalence and associated risk factors of htlv-1 and co-infections of blood-borne viruses in Birjand, Iran’s eastern border. Arch Iran Med. 2020;23(10):672-7. DOI: https://doi.org/10.34172/aim.2020.85
(29). Zhao J, Zhao F, Han W, et al. htlv screening of blood donors using chemiluminescence immunoassay in three major provincial blood centers of China. bmc Infect Dis. 2020;20(1):581. DOI: https://doi.org/10.1186/s12879-020-05282-2
(30). Oliveros H. La heterogeneidad en los metaanálisis, ¿es nuestra mejor aliada? Rev Colomb Anestesiol. 2015;43(3):176-8. DOI: https://doi.org/10.1016/j.rca.2015.05.002
Publicado
Cómo citar
Número
Sección
Categorías
Licencia
Derechos de autor 2021 Universidad de Antioquia
Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-NoComercial-CompartirIgual 4.0.
El autor o los autores conserva(n) los derechos morales y cede(n) los derechos patrimoniales que corresponderán a la Universidad de Antioquia, para publicarlo, distribuir copias electrónicas, incluirlas en servicios de indización, directorios o bases de datos nacionales e internacionales en Acceso Abierto, bajo la licencia Creative Commons Atribución-No Comercial-Compartir Igual 4.0 Internacional Comercial (CC BY-NC-SA) la cual permite a otros distribuir, remezclar, retocar y crear a partir de la obra de modo no comercial, siempre y cuando se dé crédito respectivo y licencien las nuevas creaciones bajo las mismas condiciones.